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3.2. Türkiye'deki Mevcut Ar-Ge Kurumsal Yapısı ve Etkileyen Çerçevenin Gözden

3.2.4. Kobi’lere Yönelik Teşvikler ve Ar-Ge Destekleri

Foi realizado um estudo para avaliar o grau de interferência de alguns dos excipientes mais usados nas formulações farmacêuticas utilizadas neste estudo (de acordo com as informações das bulas). Analisaram-se soluções contendo uma concentração fixa da fluoroquinolona de 20 g mL-1.

Os excipientes testados foram: celulose microcristalina, dióxido de silício, hidroxipropilmetilcelulose, polietilenoglicol (PEG 6000), lactose, dióxido de titânio, amido, talco, polivinilpirrolidona (PVP), estearato de magnésio, manitol, frutose, glicose e cloreto de benzacônio. O estudo foi realizado com concentração dos excipientes 1 e 10 vezes superior a concentração do analito. Uma substância pode ser considerada interferente se a sua presença provocar uma variação de absorbância para a concentração fixada de analito, superior a 3% quando comparado com o valor obtido na sua ausência. Não foi observada interferência de nenhum desses compostos na determinação dos analitos. IV.8. Aplicação do método proposto em amostras de formulações farmacêuticas

A metodologia analítica desenvolvida foi aplicada à determinação de norfloxacina, ciprofloxacina, levofloxacina e enrofloxacina em formulações farmacêuticas, sendo as três primeiras adquiridas em farmácias nas cidades de Araraquara/SP e Guariba/SP e as de enrofloxacina em estabelecimentos de produtos veterinários da cidade de Araraquara/SP. As soluções das diferentes amostras foram preparadas a partir das formulações em estudo, de acordo com capítulo III e posteriormente analisadas no procedimento de análise em fluxo automatizado com multi-bombas após a otimização.

A exatidão do método proposto foi avaliada através de ensaios de adição de padrão e recuperação em quatro amostras, bem como a comparação dos resultados das amostras com métodos de referência.

55 IV.8.1 Adição de Padrão e Recuperação

Para verificar a influência da matriz foram realizados experimentos de adição de padrão e recuperação em quatro medicamentos (A, E, F e H), que correspondem a cada uma das fluoroquinolonas estudadas.

Nestes estudos, quantidades conhecidas de fluoroquinolona (padrão analítico) foram adicionadas às soluções das amostras pré-analisadas. Foram realizados ensaios de recuperação em quatro níveis para cada amostra - 50, 100 e 150 e 200% - em triplicatas, da concentração do composto presente nas amostras conforme Tabela 12.

Tabela 12: Validação do método proposto por adição de padrão e recuperação.

Composto fortificação Níveis de

Conc. do composto (g mL-1) Média da concentração obtida Recuperação (%) Norfloxacina (amostra A) 10 9,75 início + 50% 15 14,3 96,9 início + 100% 20 19,2 97,2 início + 150% 25 22,9 92,5 início + 200% 30 28,8 98,8 Enrofloxacina (amostra E) 10 11,2 início + 50% 15 17,2 106,2 início + 100% 20 22,7 107,1 início + 150% 25 27,5 105,0 início + 200% 30 33,8 108,3 Ciprofloxacina (amostra F) 10 10,2 início + 50% 15 15,4 101,3 início + 100% 20 21,5 106,4 início + 150% 25 27,0 107,1 início + 200% 30 31,9 105,6 Levofloxacina (amostra H) 10 10,1 início + 50% 15 15,6 104,0 início + 100% 20 21,2 106,0 início + 150% 25 26,6 106,4 início + 200% 30 31,9 106,3

Os resultados obtidos indicam que o método apresenta boa exatidão e que não há interferência significativa da matriz no método proposto.

56 IV.8.2 Análise das amostras e comparação com os métodos de referência (HPLC-DAD)

A exatidão também foi avaliada através da comparação com métodos de referência que utilizam a Cromatografia Líquida de Alta Eficiência acoplado a detector de fotodiodo (HPLC-DAD). O método desenvolvido por Cañada et al. (2007, p. 1242-1249) foi utilizado para determinar norfloxacina, ciprofloxacina e enrofloxacina e o método proposto por Nagaraj et al. (2013, p. 102-120) utilizado para a determinação da levofloxacina.

Os resultados obtidos encontram-se esquematizados na Tabela 13 apresentando os desvios padrão da metodologia desenvolvida em relação às metodologias de referência. Os desvios padrão relativo (DPR%) foram calculados e apresentaram valores inferiores a 0,94; 0,96; 0,44 e 1,97% para a análise de formulações farmacêuticas contendo norfloxacina, ciprofloxacina, levofloxacina e enrofloxacina, respectivamente.

57

Tabela 13: Resultados da análise de formulações farmacêuticas e comparação com métodos de referência. Formulação Farmacêutica Quantidade declarada (mg) Quantidade encontradaa(mg) Tc Fc Método Métodos de desenvolvido Referênciab NORFLOXACINA A (comprimidos) 400 401 (± 0.94) 407 (± 6,6) 1,2 49,2 B (comprimidos) 400 399 (± 0.94) 395 (± 3,7) 1,9 15,5 C (solução oral 10%) 100 mg mL-1 99.8 (± 0.94) 101,1 (± 1,5) 2,4 2,5 ENROFLOXACINA D (comprimidos) 50 50,0 (± 0,48) 56 (± 2,3) 4,0 22,9 E (sol. injetável 2,5%) 25 mg mL-1 27,2 (± 0,21) 26,5 (± 0,61) 1,7 8,4 CIPROFLOXACINA F (comprimidos) 500 523 (± 1,2) 530 (± 3,4) 2,6 8,0 G (colírio 0,3%) 3,0 mg mL-1 3,2 (± 0,047) 3,3 (± 0,075) 4,0 2,5 LEVOFLOXACINA H (comp. revestido com corantes) 500 520 (± 2.3) 517 (± 5,7) 0,83 6,1

a: média ± desvio padrão de 3 análises independentes b:referências 59 e 20.

c:valores calculados de t e F (valores teóricos para 95% de nível de confiança com t = 4,30 e F = 19,00)

A realização do teste de t-Student bicaudal, calculado para duas amostras em par para médias e um nível de confiança de 95%, confirmou a ausência de diferenças estatisticamente significativas entre os resultados obtidos pelos dois métodos, uma vez que os valores de tcalc são inferiores aos valores de ttab.

Através do cálculo da razão entre o quadrado dos desvios padrão (DP) dos dois métodos (Fcalc=DPA²/DPB²), com a exceção das amostras A e D, verificou-

se que os dois métodos não apresentam diferenças significativas entre si, relativamente às suas precisões, uma vez que os valores de Fcalc são inferiores

aos valores de Ftab.

A quantidade de princípio ativo dos medicamentos A, B, C, D e G não apresentam diferenças significativas em relação à concentração nominal de

58 fluoroquinolona. Somente as amostras F e H apresentaram valores acima da quantidade esperada. De qualquer forma, todos estes valores estão na faixa de variação de ± 10% da concentração nominal, para peso médio de até 300 mg, e ± 7,5% para peso médio acima de 300 mg, que é usualmente aceita na produção desses medicamentos segundo a Farmacopeia Brasileira 5ª Ed (AGÊNCIA NACIONAL DE VIGILÂNCIA SANITÁRIA, 2010, p. 60).

Capítulo V - CONCLUSÃO

O procedimento de análise em fluxo empregando multi-bombas desenvolvido neste trabalho para a determinação de norfloxacina, ciprofloxacina, levofloxacina e enrofloxacina em formulações farmacêuticas apresentou boa precisão e exatidão. O método desenvolvido possui boa seletividade evidenciada pela possível ausência de interferência com os excipientes farmacêuticos. Como se trata de um procedimento com elevado nível de automação, esse sistema MPFS permitiu um fácil ajuste nos parâmetros físicos e químicos, dessa forma, contribuindo com o controle e desenvolvimento reacional. O uso do surfactante dodecil sulfato de sódio (SDS), não só permitiu o deslocamento (batocrômico) da absorbância máxima para a região do visível, como também aumentou a sensibilidade do método na determinação de norfloxacina, ciprofloxacina e enrofloxacina. Com isso, foi possível desenvolver um procedimento analítico mais simples, mais econômico, mais versátil e com maior ritmo de amostragem do que métodos similares já existentes na literatura (ASKAL, 2007), sendo possível obter até 40 determinações por hora, numa vazão de 1,5 mL mim-1. Para cada ciclo analítico correspondente a uma determinação, foram gastos 500 μL de amostra, 250 μL de reagente (NBS) e 1600 μL solução carregadora (água).

Portanto, a metodologia proposta revelou ser uma alternativa vantajosa se comparada com aquelas recomendadas pelas Farmacopeias que em geral são lentas, laboriosas, requerendo muitas vezes o uso de solventes de elevada toxicidade como, por exemplo, acetonitrila e metanol. Comparada com outros métodos de fluxo com determinação espectrofotométrica, verificou-se que a metodologia desenvolvida apresentou, de uma maneira geral, figuras de mérito melhores. Outro diferencial do sistema MPFS frente ao procedimento FIA convencional é o fato de apresentar menor consumo de amostra e reagente. Por

59 isso, se caracteriza como um procedimento ambientalmente amigável, estando de acordo com os princípios propostos pela Química Verde.

A metodologia analítica poderá ainda ser estendida à determinação em outras matrizes (como alimentícias e ambientais), desde que esteja associado a um processo de extração/pré-concentração eficaz ou adotada alguma estratégia de aumento de sensibilidade (como o emprego de uma cela de longo caminho ótico).

60 Referências

AGÊNCIA NACIONAL DE VIGILÂNCIA SANITÁRIA. Resolução RE nº 899, de 29 de maio de 2003. Determina a publicação do guia para validação de métodos analíticos e bioanalíticos. Diário Oficial da União, Brasília, DF, 02 jun. 2003. Disponível em:

<http://portal.anvisa.gov.br/wps/wcm/connect/4983b0004745975da005f43fbc4c673 5/RE_899_2003_Determina+a+publica%C3%A7%C3%A3o+do+Guia+para+valida %C3%A7%C3%A3o+de+m%C3%A9todos+anal%C3%ADticos+e+bioanal%C3%A Dticos.pdf?MOD=AJPERES>. Acesso em: 12 nov. 2014.

AGÊNCIA NACIONAL DE VIGILÂNCIA SANITÁRIA. Farmacopeia brasileira. 5. ed. Brasília, DF, 2010.

ALDRED, K. J.; KERNS R. J.; OSHEROFF, N. Mechanism of quinolone action and resistance. Biochemistry, v. 53, p. 1565-1574, 2014.

AMERICAN CHEMICAL SOCIETY. Discovery and development of penicillin. Disponível em:

<http://acswebcontent.acs.org/landmarks/landmarks/penicillin/penicillin.html>. Acesso em: 10 set. 2014.

ANASTAS, P. T. Green chemistry and the role of analytical methodology development. Critical Reviews in Analytical Chemistry, v. 29, n. 3, p. 167- 175, Sept. 1999.

ANASTAS, P. T.; WARNER, J. C. Principles of green chemistry. In: ____. Green chemistry: theory and practice. New York: Oxford Univ. Press, 1998. Chap. 4, p. 30.

ASKAL, H.; REFAAT, I.; DARWISH, I.; MARZOUQ, M. Evaluation of N- Bromosuccinimide as a new analytical reagent for the spectrophotometric

determination of fluorquinolone antibiotics. Chemical Pharmaceutical Bulletin, Tokyo, v. 55, n. 11, p. 1551-1556, Nov. 2007.

BRASIL. Presidência da República. Casa Civil. Lei 9.677, de 02 de julho de 1998. Altera dispositivos do Capítulo III do Título VIII do Código Penal,

incluindo na classificação dos delitos considerados hediondos crimes contra a saúde pública, e dá outras providências. Diário Oficial da União, Brasília, DF, 03, jul. 1998.

BRASIL. Presidência da República. Casa Civil. Lei 9.787, de 10 de fevereiro de 1999. Altera a Lei no 6.360, de 23 de setembro de 1976, que dispõe sobre a vigilância sanitária, estabelece o medicamento genérico, dispõe sobre a utilização de nomes genéricos em produtos farmacêuticos e dá outras providências. Diário Oficial da União, Brasília, DF, 10 fev. 1999. BRYSKIER, A.; CHANTOT, J. F. Classification and structure-activity

relationships of fluoroquinolones. Drugs, v. 49, p. 16-28, 1995. Supplement, 2. CAÑADA-CAÑADA, F.; ESPINOSA-MANSILLA, A.; MUÑOS DE LA PEÑA, A. Separation of fifteen quinolones by high performance liquid chromatography:

61 application to pharmaceuticals and ofloxacin determination in urine. Journal of Separation Science, v. 30, n. 9, p. 1242-1249, June 2007.

CARVALHO, W. A. Quinolonas. In: SILVA, P. Farmacologia. 5. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 1998.

CORDOBA-BORREGO, M.; CORDOBA-DIAZ, M.; CORDOBA-DIAZ, D. Validation of a high-performance liquid chromatographic method for the determination of norfloxacin and its application to stability studies (photo- stability study of norfloxacin). Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, v. 18, n. 6, p. 919-926, Jan. 1999.

DARWISH, I. A.; SULTAN, M. A.; AL-ARFAJ, H. A. Novel selective kinetic spectrophotometric method for determination of norfloxacin in its

pharmaceutical formulations. Talanta, v. 78, n. 4/5, p. 1383-1388, June 2009. DRLICA, K.; ZHAO, X. DNA gyrase, topoisomerase IV, and the 4-quinolones. Microbiology and Molecular Biology Reviews, v. 61, n. 3, p. 377-392, 1997. DU, J.; LI, Y.; LU, J. Chemiluminescence determination of fluoroquinolone antibiotics using a soluble manganese (IV)-sulphite system. Luminescence, v. 20, n. 1, p. 30-35, Feb. 2005.

EMMERSON, A. M.; JONES, A. M. The quinolones: decades of development and use. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, London, v. 51, p. 13-20, 2003. Supplement, 1.

ESTEVE-ROMERO, J. S.; CASTELLD, S. E. F.; SIMB-ALFONSO, M. C.; GARCIA-ALVAREZ-COQUE, G. Micellar enhanced spectrophotometric

determination of organic species. Trends in Analytical Chemistry, v. 14, n. 1, p. 87-93, Jan. 1995.

FERNANDES, P. Antibacterial discovery and development: the failure of success? Nature Biotecnology, North Carolina, v. 24, n. 12, p. 1497-1503, Dec. 2006.

GALES, A. C.; PIGNATARI, A. C.; JONES, R. N.; BARETTA, M.; SADER, H. S. Avaliação da atividade in vitro dos novos antimicrobianos da classe das

fluoroquinolonas, cefalosporinas e carbapenens contra 569 amostras clínicas de bactérias gram-negativas. Revista da Associação Médica Brasileira, São Paulo, v. 43, n. 2, p. 137-144, 1997.

GELLERT, M.; MIZUUCHI, K.; O’DEA, M. H.; NASH, H. A. DNA gyrase: an enzyme that introduces superhelical turns into DNA. Proceedings of the National Academy of Sciences, Bethesda, v. 73, p. 3872-3876, Aug. 1976. GONZALEZ, O. J. A.; MONCHON, C. M.; BARRANGAN DE LA ROSA, F. J. Spectrofluorimetric determination of levofloxacin in tablets, human urine and serum. Talanta, v. 52, n. 6, p. 1149-1156, 2000.

62 GUIMARÃES, O.; MOMESSO, L.; PUPO, T. M. Antibióticos: importância

terapêutica e perspectivas para a descoberta e desenvolvimento de novos agentes. Química Nova, São Paulo, v. 33, n. 3, p. 667-679, 2010.

KAUR, K.; KUMAR, A. ; MALIK, A.; SINGH, B.; RAO, A. Spectrophotometric methods for the determination of fluoroquinolones: a review. Critical Reviews in Analytical Chemistry, n. 38, p. 2-18, 2008.

LAFREDO, S. C.; FOLENO, B. D. Induction of resistance of Streptococcus

pneumoniae to quinolones in vitro. Chemotherapy, v. 39, n. 1, p. 36-39, 1993.

LAPA, R.; LIMA, J.; REIS, B.; SANTOS, J.; ZAGATTO, E. Multi-pumping in flow analysis: concepts, instrumentation, potentialities. Analytica Chimica Acta, v. 466, n. 1, p. 125-132, Aug. 2002.

LEE, M. K.; KANATANI, M. S. Quinolones: which generation for which microbe? Western Journal of Medicine, v. 170, n. 6, p. 359-361, 1999.

LENARDÃO, E. J.; FREITAG, R. A.; DABDOUB, M. J.; BATISTA, A. C. F.; SILVEIRA, C. da C. Green chemistry – os 12 princípios da química verde e sua inserção nas atividades de ensino e pesquisa. Química Nova, São Paulo, v. 26, n. 1, p. 123-129, 2003.

LESHER, G. Y.; FROLICH, E. J.; GRUETT, M. D.; BAILEY, J. H.; BRUNDAGE, R. P. 1,8-Naphthyridine derivatives: a new class of chemotherapeutic agents. Journal of Medicinal and Pharmaceutical Chemistry, New York, v. 91, p. 1063 -1065, June 1962.

LEVY, S. B. Antibiotic resistance: consequences of inaction. Clinical Infection Diseases, v. 33, p. 124-129, 2001. Supplement, 3.

LIMA, J. L. F. C.; SANTOS, J. L. M.; DIAS, A. C. B.; RIBEIRO, M. F. T.;

ZAGATTO E. A. G. Multi-pumping flow systems: an automation tool. Talanta, v. 64, n. 5, p. 1091-1098, Dec. 2004.

LONG, G. L.; WINEFORDNER, J. D. Limit of detection: a closer look at the IUPAC definition. Analytical Chemistry, v. 55, p. 715A-724A, 1983.

MADIGAN, M. T.; MARTINKO, J. M.; STAHL, D.; CLARK, D. P. Antimicrobial agents and pathogenicity. In: _____.Brock biology of microorganisms. Hardcover, 2009. Unit 6, Chap. 27, p. 779-810.

MAKARYUS, A. N.; BYRNS, K.; MAKARYUS, M. N.; NATARAJAN, U.;

SINGER, C.; GOLDNER, B. Effect of ciprofloxacin and levofloxacin on the QT interval: is this a significant 'clinical' event? Southern Medical Association, Long Island, v. 99, n. 1, p. 52-56, 2006.

MANIASSO, N. Ambientes micelares em química analítica. Química Nova, São Paulo, v. 24, n. 1, p. 87-93, 2001.

63 MILLER, K. Some antibiotics linked to serious nerve damage. 2013.

Disponível em: <http://www.webmd.com/brain/news/20130826/fda-strengthens- fluoroquinolone-warning>. Acesso em: 01 out. 2014.

MITCHELL, M. A. Enrofloxacin - therapeutic review. Journal of Exotic Pet

Medicine, v. 15, n. 1, p. 66-69, Jan. 2006.

NUR, F.; RAHMAN, A; SULTAN, M. Z.; UDDIN, M. G.; RASHID, M. A.,

HASSAN, A.; AHMED, M. Development and validation of a RP-HPLC method for simultaneous determination of levofloxacin and moxifloxacin in

pharmaceutical dosage forms. Journal of Basic & Applied Sciences, v. 9, p. 633-638, 2013.

ORGANIZAÇÃO PAN-AMERICANA DA SAÚDE. Dia mundial da saúde 2011. Folder de divulgação. Disponível em:

<http://www.paho.org/bra/index.php?option=com_content&view=article&id=179 0:dia-mundial-da-sade-2011->. Acesso em: 20 out. 2014

PASCUAL-REGUERA, M.; PARRAS, G.; DÍAZ, A. A single spectroscopic flow- through sensing device for determination of ciprofloxacin. Journal of

Pharmaceutical and Biomedical Analysis, v. 35, n. 4, p. 689-695, 2004. PATRICK, G. L. Antibacterial agents. In: _____. An introduction to medicinal chemistry. New York: Oxford University Press, 1995. Chap. 10, p. 154-204. PIDDOCK, L. J. V. Fluoroquinolone resistance - overuse of fluoroquinolones in human and veterinary medicine can breed resistance. British Medical Journal, Birmingham, v. 317, p. 1029-1030, Oct. 1998.

RAGABA, G. H.; AMIN, A. S. Atomic absorption spectroscopic, conductometric and colorimetric methods for determination of fluoroquinolone antibiotics using ammonium reineckate ion-pair complex formation. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscospy, v. 60, n. 4, p. 973-978, Mar. 2004.

REDDY, T. M.; BALAJI, K.; REDDY, S. J.; Voltammetric behavior of some fluorinated quinolone antibacterial agents and their differential pulse

voltammetric determination in drug formulations and urine samples using a b- cyclodextrin-modified carbon-paste electrode. Journal of Analytical

Chemistry, v. 62, n. 2, p. 168-175, 2007.

REIS, B. F. Análise química por injeção em fluxo: vinte anos de

desenvolvimento. Química Nova, São Paulo, v. 19, n. 1, p. 51-58, 1996. ROCHA, R. P.; TEIXEIRA, L. S. G., Estratégias para aumento de sensibilidade em espectrofotometria UV-Vis. Química Nova, São Paulo, v. 27, n. 5, p. 807- 812, 2004.

ROCHA, R. P.; NÓBREGA, J. A.; FATIBELLO, O. F. Flow analysis strategies to greener analytical chemistry - an overview. Green Chemistry, v. 3, p. 216-220, Sept. 2001.

64 RUFINO, J. L.; PEZZA, H. R.; PEZZA, L. Sequential injection analysis system with spectrophotometric detection for norfloxacin and ciprofloxacin in

pharmaceutical formulations. Quimica Nova, v. 34, n. 2, p. 256-261, 2011. RUZICKA, J. The second coming of flow-injection analysis. Analytica Chimica Acta, v. 261, n. 1/2, p. 3-10, May 1992.

SANTOS, J. L. M.; RIBEIRO, M. F. T.; DIAS, A. C. B.; ZAGATTO, E. E. A. Multi-pumping flow systems: the potential of simplicity. Analytica Chimica Acta, v. 600, n. 1/2, p. 21-28, Sept. 2007.

SARRO, A. D.; SARRO, G. D. Adverse reactions to fluoroquinolones: an overview on mechanistic aspects. Current Medicinal Chemistry, v. 8, n. 4, p. 371-384, Mar. 2001.

SCHOLAR, E. M. Fluoroquinolines: past, present and future of a novel group of antibacterial agents. American Journal of Pharmaceutical Education, v. 66, p. 164-172, 2002.

SULTAN, S. M.; SULIMAN, F. O. Flow injection spectrophotometric

determination of the antibiotic ciprofloxacin in drug formulations. Analyst, v. 117, n. 9, p. 1532-1536, 1992.

SVERSUT, R. A.; AMARAL, M. S.; BARONI, A. C. M.; RODRIGUES, P. O.; ROSA, A. M.; GERLIN, M. C.; SINGHD, A. K.; KASSAB, N. M.; Stability- indicating HPLC-DAD method for the simultaneous determination of

fluoroquinolones and corticosteroids in ophthalmic formulations. Analytical Methods, v. 6, p. 2125-2133, 2014.

TAVARES, W. Manual de antibióticos e quimioterápicos antiinfecciosos. 2. ed. São Paulo: Atheneu, 1996.

VAN BAMBEKE, F.; MICHOT, J. M.; VAN ELDERE, J.; TULKENS, P. M. Quinolones in 2005: an update. Clinical Microbiology and Infection, v. 11, n. 4, p. 256-280, 2005.

VANCUTSEM, P. M.; BABISH, J. G.; SCHUARK, W. S. The fluoroquinolone antimicrobials: structure, antimicrobial activity, pharmacokinetics, clinical use in domestic animals and toxicity. Cornell Vet, Ithaca, v. 80, n. 2, p. 173-186, 1990.

WAHED, M. G. A.; SHEIKH, R. El.; GOUDA, A. A.; TALEB, S. A. Kinetic spectrophotometric determination of some fluoroquinolones antibiotics in bulk and pharmaceutical preparations. Bulletin of the Chemical Society, Ethiopia, v. 27, n. 3, p. 329-346, 2013.

WALKER, R. C.; Symposium on antimicrobial agents-part XIII: the fluoroquinolones. Mayo Clinic Proceedings, v. 74, p. 1030-1037, 1999.

65 WALSH, C. Antibiotics that block DNA replication and repair: the quinolones. In: ______. Antibiotics: actions, origins, resistance. Washington, DC: ASM Press, 2003. Sect. II, chap. 5, p. 154-157.

WISPELWEY, B.; SCHAFER, K. R. Fluoroquinolones in the management of community-acquired pneumonia in primary care. Expert Review of Anti- infective Therapy, v. 8, n. 11, p. 1259-1271, Nov. 2010.

WORLD HEALT ORGANIZATION. Antimicrobial Resistance - global report on surveillance. Disponível em:

<http://www.who.int/drugresistance/documents/surveillancereport/en/>. Acesso em: 22 out. 2014.

YAMANE, N.; JONES, R. N.; FREI, R.; HOBAN, D. J.; PIGNATARI, A. C.; MARCO, F. Levofloxacin in vitro activity: results from an international

comparative study with ofloxacin and ciprofloxacin. Journal of Chemotherapy, v. 6, n. 2, p. 83-91, Apr. 1994.

ZHANG, M. Q.; HAEMERS, A. Quinolone antimicrobial agents: structure-activity relationships. Pharmazie, Eschborn, v. 46, n. 10, p. 687-700, Oct. 1991.