• Sonuç bulunamadı

Os terpenos são o maior grupo de fitoquímicos, os quais exibem diversas funções na mediação de interações benéficas e antagônicos entre os organismos. Espécies de Jatropha são ricas em terpenóides. Dentre os terpenos, os diterpenos, são os mais estudados desse gênero, sendo os ésteres de forbol o diterpeno de maior interesse no estudo de Jatropha

curcas(DEVAPPA et al., 2010).

Em plantas os diterpenóides são sintetizados em três passos principais. No primeiro, a unidade de isopreno isopentenil difosfato (IPP) é sintetizada através da via do 1-desoxi-D- xilulose-5-fosfato (DXP), quatro das sete enzimas que compõem essa via foram identificadas no presente trabalho: 1-desoxi-D-xilulose-5-fosfato reductoisomerase, 2 - C- metil-D-eritritol 4-fosfato citidililtransferase, 4 - (citidina 5’-difosfato)-2-C-metil-D-eritritol- quinase, e (E) -4 - hidroxi-3-metilbut-2-enil-difosfato-sintase. Com isso, sugere-se que a via DOXP encontra-se em funcionamento nos plastídeos, como sugerido previamente nos estudos transcriptômicos de sementes do pinhão manso em desenvolvimento (KING et al., 2011).

Numa segunda etapa, o isoprenil difosfato sintase catalisa a síntese dos precursores intermediários do difosfato: geranil difosfato, farnesil difosfato, e geranilgeranil difosfato (GGPP) a partir da unidade do isopreno. Nas amostras de proteínas plastidiais do endosperma em desenvolmento do pinhão manso, a GGPP sintase foi identificada. Essa enzima é responsável pela síntese do GGPP, um precursor de diversos diterpenos. Entretanto não foram identificadas enzimas envolvidas na síntese de outros precursores do GGPP.

O terceiro passo na formação dos diversos diterpenóides ocorre pela ação da terpeno sintase/ciclase, mas nenhuma delas foi identificada no presente trabalho. As proteínas relacionadas com o metabolismo secundário, presentes nos plastídeos do endosperma de sementes em desenvolvimento do pinhão manso, estão listadas na tabela 6 (ver figura 14 e tabela suplementar 4).

Em estudo transcriptômico de sementes em desenvolvimento de J.curcas, King et al. (2011) também não identificaram transcritos para as terpeno sintase, embora tenham detectado todos os transcritos que codificam para enzimas da via DOXP.

As enzimas que podem estar envolvidas na síntese de ésteres de forbol foram detectadas a partir dos estudos transcriptômicos e proteômicos de sementes de pinhão manso realizados por Costa et al. (2010) e Soares et al. (2014). Dentre estas, pode-se destacar transcritos envolvidos nas vias biossintéticas do isopentenil pirofosfato (IPP) e do

dimetilalil pirofosfato (DPP) que são os precursores de todas as classes de terpenos sintetizados em plantas. Estes compostos são sintetizados tanto a partir de vias que ocorrem no citoplasma (via do mevalonato), quanto de vias que ocorrem nos plastídeos (via do 1-deoxi-D-xilulose-5-fosfato - DXP) (ZULAK; BOHLMANN, 2010).

O geranilgeranilpirofosfato (GGPP), sintetizado pela ação da geranilgeranilpirofosfato sintase, é o substrato de uma ampla variedade de ciclases que catalisam a formação de diterpenos cíclicos os quais serão processados de diferentes maneiras culminando com a síntese de diterpenos específicos (YAMAGUCHI, 2008). Embora ainda sem evidência experimental, acredita-se que os ésteres de forbol são sintetizados a partir do casbeno que é sintetizado através da ciclização do geranilgeranilpirofosfato pela sintase do casbeno. A via biossintética do forbol ainda não está completamente delineada, mas segundo Dewick (2002) pode se originar a partir da ciclização do geranilgeranilpirofosfato (GGPP) (Figura 16), que cria um cátion contendo um anel de 14 membros. A perda de um próton quando da formação do anel do ciclopropano leva à formação do casbeno, composto que na mamona (Ricinus communis) é um metabólito antifúngico. O casbeno é provavelmente o precursor do forbol. Dessa maneira, a via de síntese dos ésteres de forbol a partir do geranilgeranilpirofosfato não tem intermediários comuns com a síntese de diterpenos importantes para o metabolismo primário das plantas, como , por exemplo, as giberelinas. A sintase do casbeno foi isolada primeiramente de folhas da mamoneira (Ricinus communis) e usa o geranilgeranilpirofosfato como substrato para produzir diretamente o casbeno, uma fitoalexina.

Diante dos dados expostos, sugere-se que os plastídeos isolados a partir do endosperma de sementes em desenvolvimento do pinhão manso não sintetizam ésteres de forbol. Um suporte experimental para essa proposta encontra-se na observação feita por He

et al. (2011), ao mostrarem que a maior deposição de ésteres de forbol em semente do pinhão manso ocorre no tegma e não no endosperma. O tégma é um tecido de origem materna, o qual se origina a partir do integumento interno das sementes, ele é importante para a transferência de nutrientes dos tecidos de origem materna para o endosperma e o embrião. Na semente madura esse tecido se reduz a uma fina camada, que juntamente com a testa formam a casca da semente.

Tabela 6 - Proteínas relacionadas com o metabolismo secundário, presentes nos plastídeos do endosperma de sementes em desenvolvimento do pinhão manso, com base no KEGG.

ProteinID Protein description communisHitBest Ricinus Best Arabidopsisthaliana Hit Final locaization

Jcr4S00021.320 3-hydroxyacyl-CoA dehyrogenase, putative B9RKN5 AT4G29010.1 P

Jcr4S00035.80 delta-1-pyrroline-5-carboxylate dehydrogenase B9R960 AT5G62530.1 P

Jcr4S00115.180 aldehyde dehydrogenase, putative B9RZQ0 AT3G66658.2 P

Jcr4S00558.90 Delta3,5-delta2,4-dienoyl-CoA isomerase B9RM93 AT5G43280.1 P

Jcr4S00616.80 3-hydroxyacyl-CoA dehyrogenase, putative B9RT76 AT3G06860.1 P

Jcr4S00742.70 acetyl-CoA acetyltransferase, mitochondrial, putative B9SA57 AT5G48230.2 P

Jcr4S01649.10 aldehyde dehydrogenase, putative B9T4Y7 AT3G51050.1 P

Jcr4S01936.100 aldehyde dehydrogenase - - P

Jcr4S02497.10 aldehyde dehydrogenase, putative B9RB49 AT3G48000.1 P

Jcr4S03546.10 aldehyde dehydrogenase, putative B9RB49 AT3G48000.1 P

Jcr4S04843.20 3-hydroxyisobutyryl-coenzyme a hydrolase-like B9RPB0 AT4G13360.1 P

Jcr4S04843.30 3-hydroxyisobutyryl- hydrolase-like protein 4 B9RPB0 AT4G13360.1 P

Jcr4S08423.20 aldehyde dehydrogenase Family B9RB49 AT1G23800.1 P

Jcr4S11660.10 betaine aldehyde dehydrogenase B9R8Y8 AT1G74920.1 P

Jcr4S26962.10 aldehyde dehydrogenase family 3 member B9S2Y3 AT1G44170.2 P

Jcr4S01018.60 3-ketoacyl-CoA thiolase B, putative B9RWL7 AT2G33150.1 P

Jcr4S15816.20 3-ketoacyl-CoA thiolase B, putative B9S554 AT2G33150.1 P

gi|225544133 acetyl-CoA carboxylase carboxyl transferase subunit G1D767 ATCG00500.1 P

Jcr4S00416.90 -carboxyl-tansferase ( -CT) subunit of Het-ACCase B9SPE5 AT2G38040.2 P

Jcr4S01232.50 Biotin carboxyl carrier protein subunit of of Het-ACCase B9RM56 AT5G16390.1 P

Jcr4S03449.40 biotin carboxylase precursor B9S1E2 AT5G35360.1 P

Jcr4S09385.30 acetyl-CoA carboxylase carboxyl transferase subunit G1D767 ATCG00500.1 P

Jcr4U29862.20 acetyl-CoA carboxylase carboxyl transferase subunit beta G1D767 ATCG00500.1 P

Jcr4U31237.20 acetyl-coenzyme a carboxylase carboxyl transferase subunit - - P

Jcr4U32160.10 acetyl-CoA carboxylase carboxyl transferase subunit beta G1D767 ATCG00500.1 P

Jcr4S00057.90 transketolase, putative B9RDA1 AT2G45290.1 P

Jcr4S00202.110 dtdp-glucose 4-6-dehydratase, putative B9SAR7 AT3G62830.2 P

Jcr4S00225.120 pyruvate dehydrogenase, putative B9S0Z5 AT2G34590.1 P

Jcr4S00089.150 1-deoxy-D-xylulose 5-phosphate reductoisomerase B9RB24 AT5G62790.1 P

Jcr4S00528.60 2-C-methyl-D-erythritol 4-phosphate cytidylyltransferase B9S047 AT2G02500.1 P

Jcr4S01187.50 4-hydroxy-3-methylbut-2-en-1-yl diphosphate synthase B9SWB7 AT5G60600.1 P

Jcr4S05483.10 4-diphosphocytidyl-2-c-methyl-d-erythritol kinase B9SB47 AT2G26930.1 P

Jcr4S07015.40 geranylgeranyl pyrophosphate synthase-related protein B9SUY3 AT4G38460.1 P

Jcr4S01069.20 curcin precursor B9RRJ1 - -

6 CONCLUSÃO

O presente trabalho realizou a primeira análise do proteoma dos plastídeos isolados do endosperma de sementes em desenvolvimento do pinhão manso. Utilizando os dados de sequencia do genoma do pinhão manso, foi possível identificar 923 proteínas relacionadas com diversas atividades metabólicas. Além da identificação das proteínas responsáveis pela biossíntese de ácidos graxos e de outras importantes vias metabólicas, que ocorrem nos plastídeos, também foram identificadas uma série de proteínas transportadoras relacionadas com a captação de fontes de carbono e nitrogênio, que são fontes necessárias para promover as vias biossintéticas. Apesar de várias enzimas, envolvidas na síntese dos precursores de diterpenos, terem sido identificadas, nenhuma terpeno sintase/ciclase foi detectada. Dessa forma, possivelmente os plastídeos, isolados a partir do endosperma de sementes em desenvolvimento do pinhão manso, não sintetizam ésteres de forbol.

O estudo exposto fornece insights sobre as principais vias biossintéticas e mostra características originais dos plastídeos do endosperma de sementes em desenvolvimento em nível de proteoma. Além disso, abre prerrogativa para o estudo proteômico dos plastídeos do integumento de sementes do pinhão manso em desenvolvimento para se obter uma maior amplitude de dados referentes às proteínas plastidiais envolvidas na síntese dos ésteres de forbol, bem como nas demais vias metabólicas que ocorrem nos plastídeos.

7 CONSIDERAÇÕES FINAIS

Os dados obtidos por He et al. (2011), permitem formular a hipótese de que as enzimas relacionadas com a síntese dos ésteres de forbol, com foco para sintase do casbeno, estejam localizadas nos plastídeos do tegma. Outra possibilidade é que a enzima sintase do casbeno possa estar presente em outros tecidos que não na semente, nos quais ocorrem a síntese dos ésteres de forbol sendo estes, em seguida, transportados até as sementes.

Os dados produzidos pelos estudos proteômicos do pinhão manso, tornam-se cruciais para melhor compreender e explorar as diversas vias biossintéticas que ocorrem nos plastídeos, e proporcionar um maior alicerce de dados aos experimentos de melhoramento genético. No pinhão manso as vias metabólicas de biossíntese dos lipídios e dos ésteres de forbol são as que despertam maior interesse para o melhoramento. Seja para produzir óleo de melhor qualidade e em maior quantidade, ou para diminuir o nível dos compostos tóxicos, principalmente os ésteres de forbol (terpenóide).

Levando em conta a ampla gama de funções que os terpenóides desempenham em plantas, tais como defesa, reguladores de crescimento, etc (KIRBY; KEASLING, 2009), é patente que a interferência em reações que produzam precursores comuns à síntese de várias classes de terpenos, pode ter consequências drásticas para a planta. Por exemplo, a inibição da síntese de geranilgeranilpirofosfato (GGPP) pelo silenciamento da GGPP sintase, certamente levaria a uma dramática redução na síntese tanto de diterpenos, como, por exemplo, de giberelinas, bem como de carotenóides uma vez que o geranilgeranilpirofosfato é precursor destes. Neste contexto, é interessante chamar a atenção que a despeito de várias tentativas exitosas de silenciar genes envolvidos na sintese de terpenóides (JASSBI et al., 2007), o efeito do silenciamento destes genes no desempenho da planta em condições de campo ainda não foi analisada.

A hipótese de que a síntese dos ésteres de forbol tem o casbeno como intermediário, poderá ser testada através de experimentos onde a expressão da sintase do casbeno é transitoriamente bloqueada através de silenciamento gênico mediado por vírus (VIGS). Daí tamanho o interesse em continuar a busca pelo conhecimento da via síntese dos ésteres de forbol.

8 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ABDELGADIR, H.A.; STADEN, J. V. Ethnobotany, ethnopharmacology and toxicity of Jatropha

curcasL. (Euphorbiaceae): A review. South African Journal of Botany 88: 204–218, 2013.

ABDULLA, R.; CHAN, E. S.; RAVINDRA, P. Biodiesel production from Jatropha curcas: a critical review. Critical Reviews in Biotechnology 31: 53-64, 2011.

ACHTENA, W. M. J.; VERCHOTB, L.; FRANKENC, Y. J.; MATHIJSD, E.; SINGHE, V.P.; AERTSA, R.; MUYSA, B. Review Jatropha biodiesel production and use. Biomass and Bioenergy 32: 1063–1084, 2008.

ADOLF, W.; OPFERKUCH, H. J.; HECKER, E. Irritant phorbol derivatives from four Jatropha species. Phytochemistry 23:129–132, 1984.

AGRAWAL, G. K.; PEDRESCHI, R.; BARKLA, B. J.; BINDSCHEDLER, L. V.; CRAMER, R.; SARKAR, A. et al. Translational plant proteomics: a perspective. Journal of Proteomics 75: 4588-601, 2012.

ALTSCHUL, S. F.; GISH, W.; MILLER, W.; MYERS, E. W.; LIPMAN, D. J. Basic local alignment search tool. Journal of Molecular Biology 215 (3): 403−410, 1990.

ANDERSEN, J. S. e MANN, M.. Organellar proteomics: turning inventories into insights. EMBO Reports 7 (9): 874-879, 2006.

ANDON, N. L.; HOLLINGWORTH, S.; KOLLER, A.; GREENLAND, A. J. et al. Proteomic characterization of wheat amyloplasts using identification of proteins by tandem mass spectrometry. Proteomics 2: 1156–1168, 2002.

ANNARAO, S.; SIDHU, O. P.; ROY, R.; TULI. R.; KHETRAPAL. C. L. Lipid profiling of developing

Jatropha curcas L. seeds using 1H NMR spectroscopy. Bioresource Technology 99: 9032- 9035, 2008.

ARMBRUSTER, U.; HERTLE, A.; MAKARENKO, E. Z.; UHLKE, J.; PRIBIL, M.; et al. Chloroplast proteins without cleavable transit peptides: rare exceptions or a major constituent of the chloroplast proteome? Molecular Plant 2:1325–35, 2009.

ASIF, M. H.; MANTRI, S. S.; SHARMA, A.; SRIVASTAVA, A.; TRIVEDI, I.; GUPTA, P.; MOHANTY, C. S.; SAWANT, S. V.; TULI, R. Complete sequence and organization of the

Jatropha curcas (Euphorbiaceae) chloroplast genome. Tree Genetics & Genomes 6 (6), 941−952, 2010.

ATABANI, A. E.; SILITONGA, A. S.; ONG, H. C.; MAHLIA, T. M. I.; MASJUKI, H. H.; ANJUM BADRUDD in IRFAN, et al. Non-edible vegetable oils: a critical evaluation of oil extraction,fatty acid compositions, biodiesel production, characteristics, engine performance and emissions production. Renewable and Sustainable Energy Reviews 18: 211–45, 2013.

BADAMI, R. C.; PATI, K. B. Structure and occurrence of unusual fatty acids in minor seed oils. Progress in Lipid Research 19:119–153, 1981.

BAE, M. S.; CHO, E. J.; CHOI, E. Y.; PARK, O. K. Analysis of the Arabidopsis nuclear proteome and its response to cold stress. The Plant Journal: for cell and molecular biology 36: 652– 663, 2003.

BAGINSKY, S. Plant proteomics: concepts, applications, and novel strategies for data interpretation. Mass Spectrometry Reviews 28(1): 93-120, 2009.

BAGINSKY, S.; SIDDIQUE, A.; GRUISSEM, W. Proteome Analysis of Tobacco Bright Yellow-2 (BY-2) Cell Culture Plastids as a Model for Undifferentiated Heterotrophic Plastids research articles. Journal of Proteome Research 3 (6): 1128−1137, 2004.

BALAT, M. Potential alternatives to edible oils for biodiesel production — a review of current work. Energy Conversion and Management 52 (2):1479–92, 2011.

BALMER, Y.; VENSEL, W. H.; DUPONT, F. M.; BUCHANAN, B. B.;HURKMAN, W. J. Proteome of amyloplasts isolated from developing wheat endosperm presents evidence of broad metabolic capability. Journal of Experimental Botany 57 (7): 1591−602, 2006.

BARSAN, C.; SANCHEZ-BEL, P.; ROMBALDI, C.; EGEA, I.; ROSSIGNOL,M.; KUNTZ, M.; ZOUINE, M.; LATCHÉ, A.; BOUZAYEN, M.; PECH, J. C. Characteristics of the tomato chromoplast revealed by proteomic analysis. Journal of Experimental Botany: 61 (9), 2413−2431, 2010.

BATES, P. D.; STYMNE S.; OHLROGGE, J. Biochemical pathways in seed oil synthesis. Current Opinion in Plant Biology: 16:358–364, 2013.

BAUER, J.; CHEN, K.; HILTBUNNER, A.; WEHRLI, E.; EUGSTER, M.; SCHNELL, D.; KESSLER, F. The major protein import receptor of plastids is essential for chloroplast biogenesis. Nature: 403 (6766), 203−207, 2000.

BERCHMANS, H. J.; HIRATA, S. Biodiesel production from crude Jatropha curcas L. seed oil with a high content of free fatty acids. Bioresource Technology 99 (6): 1716–21, 2008.

BERTOLINI, T.; GIORGIONE, J.; HARVEY, D.; NEWTON, A. Protein kinase C translocation by modified phorbol esters with functionalized lipophilic regions. Journal of Organic Chemistry 68: 5028–5036, 2003.

BLUMBERG, P. M.; KEDEI, N.; LEWIN, N. E.; YANG, D.; TAO, J.; TELEK, A.; GECZY, T. Chapter 3 - Phorbol Esters and Diacylglycerol: The PKC Activators. M.G. Kazanietz (ed.), In: Protein Kinase C in Cancer Signaling and Therapy. Current Cancer Research p.25-53, 2010.

BOORANASRISAK, T.; PHAONAKROP, N.; JARESITTHIKUNCHAI, J.; VIRUNANON, C.; ROYTRAKUL, S.; CHULALAKSANANUKUL, W. Proteomic evaluation of free fatty acid biosynthesis in Jatropha curcas L. (physic nut) kernel development. African Journal of Biotechnology 12:3132-42, 2013.

BOURGIS, F.; KILARU, A.; CAO, X.; NGANDO-EBONGUE, G. F.; DRIRA,N.; OHLROGGE, J. B.; ARONDEL, V. Comparative transcriptome and metabolite analysis of oil palm and date palm mesocarp that differ dramatically in carbon partitioning. Proceedings of the National Academy of Sciences 108 (30): 12527−12532, 2011.

BOYLE, S. A.; HEMMINGSEN, S. M.; DENNIS, D. T. Uptake and processing of the precursor to the small subunit of Ribulose 1,5 bisphosphate carboxylate by leucoplasts from endosperm of developing castor oil seeds. Plant Physiology 81 (3), 817−822, 1986.

BRADFORD, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry 72, 248−254, 1976.

BRUNET, S.; THIBAULT, P.; GAGNON, E., KEARNEY, P., BERGERON,J. J. E DESJARDINS, M. Organelle proteomics: looking at less to see more. Trends in Cell Biology 13, 629–638, 2003.

BUCHANAN, B. B.; GRUISSEM, W.; JONES, R. L. Capitulo 10: In Biochemistry & Molecular Biology of Plants, 2000.

BUSTROS, A.; BAYLIN, S.; BERGER, C.; ROOS, B.; LEONG, S.; NELKIN, B. Phorbol esters increase calcitonin gene transcription and decrease c-mycm RNA levels in cultured human medullary thyroid carcinoma. The Journal of Biological Chemistry 260: 98–104, 1985.

CAHOON, E.; CLEMENTE, T.; DAMUDE, H.; KINNEY, A. Modifying vegetable oils for food and non-food purposes. In Oil Crops. Edited by Vollmann J, Rajcan I. New York: Springer: 31-56. Handbook of Plant Breeding, vol 4, 2010.

CALIKOWSKI, T. T., MEULIA, T.; MEIER, I. A proteomic study of the Arabidopsis nuclear matrix. Journal of Cellular Biochemistry 90: 361–378, 2003.

CARVALHO, P. C.; FISCHER, J. S. G.; XU, T.; COCIORVA, D.; BALBUENA,T. S.; VALENTE, R. H.; PERALES, J.; YATES, J. R.; BARBOSA, V. C. Searchengine processor: Filtering and organizing peptide spectrum matches. Proteomics 12 (7): 944−949, 2012.

CHAIT, B. T. Mass spectrometry: bottom-up or top-down? Science 314 (5796): 65-66, 2006.

CHAMPAGNE, A.; BOUTRY, M. Proteomics of nonmodel plant species. Proteomics 13: 663-73, 2013.

CHAPMAN, K. D.; DYER, J. M.; MULLEN, R. T. Biogenesis and functions of lipid droplets in plants: thematic review series: lipid droplet synthesis and metabolism: from yeast to man. The Journal of Lipid Research, 53:215-226, 2012.

CHEN, M. S.; WANG, G. J.; WANG, R. L.; WANG, J.; SONG, S. Q.; XU, Z. F. Analysis of expressed sequence tags from biodiesel plant Jatropha curcas embryos at different developmental stages. Plant Science 181: 696-700, 2011.

CHEN, S.; HARMON, A. C. Advances in plant proteomics. Proteomics 6: 5504-16, 2006.

CHOU, K. C.; SHEN, H. B. Plant-mPLoc: a top-down strategy to augment the power for predicting plant protein subcellular localization. PloS One 5 (6): e11335−e11335, 2010.

CONCEICAO, M. M.; CANDEIA, R. A.; SILVA, F. C.; BEZERRA, A. F.; FERNANDES JR. V. J.; SOUZA, A. G. Thermoanalytical characterization of castor oil biodiesel. Renewable and Sustainable Energy Reviews 11: 964-975, 2007.

CONESA, A.; GÖTZ, S. Blast2GO: A comprehensive suite for functional analysis in plant genomics. International Journal of Plant Genomics 2008: 619832−619832, 2008.

COSTA, G. G. L.; CARDOSO, K. C.; DEL BEM, L. E. V.; LIMA, A. C.; CUNHA, M. A. S.; DE CAMPOS-LEITE, L.; VICENTINI, R.; PAPES, F.;MOREIRA, R. C.; YUNES, J. A.; CAMPOS, F. A. P.; DA SILVA, M. J. Transcriptome analysis of the oil-rich seed of the bioenergy crop Jatropha

curcasL. BMC Genomics 11: 462−462, 2010.

COTTE-RODRIGUEZ, I.; MIAO, Z.; ZHANG, Y.; CHEN, H. Introduction to Protein Mass Spectrometry, Characterization of Protein Therapeutics using Mass Spectrometry. Guodong Chen, Ed., Springer Science Business Media. New York, 2013.

CUTLER, S. R.; EHRHARDT, D. W.; GRIFFITTS, J. S.; SOMERVILLE, C. R. Random GFP::cDNA fusions enable visualization of subcellular structures in cells of Arabidopsis at a high frequency. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 97, 3718–3723, 2000.

DAHER, Z.; RECORBET, G.; VALOT, B.; ROBERT, F.; BALLIAU, T.; POTIN, S., SCHOEFS, B.; DUMAS-GAUDOT, E. Proteomic analysis of Medicago truncatula root plastids. Proteomics 10: 2123-2137, 2010.

DE HOOG, C. L.; MANN, M. Proteomics. Annual Review of Genomics and Human Genetics 5: 267-293, 2004.

DELANNOY, E.; FUJII, S.; FRANCS-SMALL C. C.; BRUNDRETT, M.; SMALL, I. Rampant gene loss in the underground orchid Rhizanthella Gardneri highlights evolutionary constraints on plastid genomes. Molecular Biology and Evolution 28 (7): 2077–2086, 2011.

DEMARTINI, D. R.; JAIN, R.; AGRAWAL, G.; THELEN, J. J. Proteomic comparison of plastids from developing embryos and leaves of Brassica napus. Journal of Proteome Research 10 (5): 2226−2237, 2011.

DEVAPPA, R.; MAKKAR, H.; BECKER, K. Jatropha toxicity—a review. Journal of Toxicology and Environmental Health 13: 476–507, 2010.

DEVAPPA, R. K.; RAJESH, S. K.; KUMAR, V.; MAKKAR, H. P. S.; BECKER, K. Localisation of antinutrients and qualitative identification of toxic components in Jatropha curcas seed. Journal of the Science of Food and Agriculture 92: 1519–1525, 2012.

DEWICK, P. M. Medicinal Natural Products. John Wiley and Sons, Ltd. ISBN 0471496405.F, 2002.

DOMON, B.; AEBERSOLD, R. Mass Spectrometry and Protein Analysis. Science: 312 (5771): 212-217, 2006.

DUCLOS, S.; DESJARDINS, M. Organelle proteomics. Methods in Molecular Biology 753:117- 128, 2011.

DUNKLEY, T. P. J.; WATSON, R.; GRIFFIN, J. L.; DUPREE, P.; LILLEY, K. S. Localization of Organelle Proteins by Isotope Tagging (LOPIT). Molecular & Cellular Proteomics 3 (11): 1128- 1134, 2004.

DUNKLEY, T. P.; HESTER, S.; SHADFORTH, I. P.; RUNIONS, J.; WEIMAR, T.; HANTON, S. L.; GRIFFIN, J. L.; BESSANT, C.; BRANDIZZI, F.; HAWES, C. et al. Mapping the Arabidopsis organelle proteome. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 103: 6518–6523, 2006.

EL RAFEI, S.; EL DIWANI, G.; HAWASH, S. Ozone for phorbol esters removal from Egyptian

Jatrophaoil seed cake. Advances in Applied Science Research 4: 221–232, 2011.

EMANUELSSON, O.; NIELSEN, H.; BRUNAK, S.; VON HEIJNE, G. Predicting subcellular localization of proteins based on their N terminal amino acid sequence. The Journal of Molecular Biology 300 (4): 1005−1016, 2000.

EMANUELSSON, O.; NIELSEN, H.; VON HEIJNE, G. ChloroP, a neural lnetwork-based method for predicting chloroplast transit peptides and their cleavage sites. Protein Science 8 (5), 978−984, 1999.

EMMETT, M. R.; CAPRIOLI, R. M. Micro-electrospray mass spectrometry: Ultra-high-sensitivity analysis of peptides and proteins. Journal of the American Society for Mass Spectrometry 5 (7): 605-13, 1994.

ESWARAN, N.; PARAMESWARAN, S.; ANANTHARAMAN, B.; KUMAR, G.R.; SATHRAM, B.; JOHNSON, T. S. Generation of an expressed sequence tag (EST) library from salt-stressed roots of Jatropha curcas for identification of abiotic stress-responsive genes. Plant Biology 14: 428- 437, 2012.

EVANS, F. J. Naturally occurring phorbol esters. Boca Raton, FL: CRC Critical Review in Toxicology, 1986.

NOGUEIRA, F. C. S. Abordagens proteômicas no estudo do metabolismo de ácidos graxos e da deposição de alérgenos e toxinas em sementes maduras e em desenvolvimento de Ricinus

communi. Tese UFRJ, Instituto de Química, Departamento de Biquímica. 2012.

FAIRLESS, D. Biofuel: the little shrub that could–maybe. Nature 449: 652–655, 2007.

FAZAL, M. A.; HASEEB, A. S. M. A; MASJUKI, H. H. Biodiesel feasibility study: an evaluation of material compatibility; performance; emission and engine durability. Renewable and Sustainable Energy Reviews 15(2): 1314–24, 2011.

FENN, J. B.; MANN, M.; MENG, C. K.; WONG, S. F.; WHITEHOUSE, C. M. Electrospray ionization for mass spectrometry of large biomolecules. Science 246 (4926): 64-71, 1989.

FERRO, M.; BRUGIERE, S.; SALVI, D.; SEIGNEURIN-BERNY, D.; COURT,M. et al. AT_CHLORO, a comprehensive chloroplast proteome database with subplastidial localization and curated information on envelope proteins. Molecular & Cellular Proteomics 9:1063–84, 2010.

FERRO, M.; SALVI, D.; BRUGIERE, S.; MIRAS, S.; KOWALSKI, S.; LOUWAGIE, M.; GARIN, J.; JOYARD, J.; ROLLAND, N. Proteomics of the chloroplast envelope membranes from Arabidopsis

thaliana. Molecular & Cellular Proteomics 2: 325–345, 2003.

FISCHER, K. The Import and Export Business in Plastids: Transport Processes across the Inner Envelope Membrane. Plant Physiology 155: 1511–1519, 2011.

FLÜGGE, U.- I.; HÄUSLER, R. E.; LUDEWIG, F.; GIERTH, M. The role of transporters in supplying energy to plant plastids. Journal of Experimental Botany 62(7): 2381−2392, 2011.

FRANCIS, G.; EDINGER, R.; BECKER, K. A concept for simultaneous wasteland reclamation, fuel production, and socio-economic development in degraded areas in India: Need, potential and perspectives of Jatropha plantations. Natural Resources Forum 29 (1): 12 – 24, 2005.

FRISO, G.; MAJERAN, W.; HUANG, M.; SUN, Q.; VAN WIJK, K. J. Reconstruction of metabolic pathways, protein expression, and homeostasis machineries across maize bundle sheath and mesophyll chloroplasts: large-scale quantitative proteomics using the first maize genome assembly. Plant Physiology 152 (3), 1219−1250, 2010.

FRISO, G.; GIACOMELLI, L.; YTTERBERG, A. J.; PELTIER, J. B.; RUDELLA, A.; SUN, Q.; WIJK, K. J. In-depth analysis of the thylakoid membrane proteome of Arabidopsis thaliana chloroplasts: new proteins, new functions, and a plastid proteome database. Plant Cell 16: 478– 499, 2004.

FROEHLICH, J. E.; WILKERSON, C. G.; RAY, K.; MCANDREW, R. S.; OSTERYOUNG, K. W.; GAGE, D. A.; PHINNEY, B. S. Proteomic study of the Arabidopsis thaliana chloroplastic envelope membrane utilizing alternatives to traditional two-dimensional electrophoresis. Journal of Proteome Reasearch 2: 413–425, 2003.

GANDHI, V,; CHERIAN, K.; MULKY, M. Toxicological studies on Ratanjyot Oil. Food and Chemical Toxicology 33: 39–42, 1995.

Gene Ontology Consortium. The Gene Ontology (GO) project in 2006. Nucleic Acids Research 34, D322–326, 2006.

GOEL, G.; MAKKAR, H. P. S.; FRANCIS, G.; BECKER, K. Phorbol esters: structure, biological activity, and toxicity in animals. International Journal of Toxicology 26 (4): 279−288, 2007.

GOMES, K. A.; ALMEIDA, T. C.; GESTEIRA, A. S.; LÔBO, I. P.; GUIMARÃES, A. C. R.; MIRANDA, A. B. D.; et al. ESTs from Seeds to Assist the Selective Breeding of Jatropha curcas