5.1 Sonuçlar
Bu araştırmada, Türkiye‟de farklı lokasyonlardan toplanan kapari bitkisi meyvesinden elde edilen kapari tohumlarının 6 farklı numune grubu ( C. spinosa var. spinosa, C. spinosa var. aegyptia, C. spinosa var. inermis, C. spinosa var. herbaceae, C. ovata var. canescens, C. ovata var. palaestina), iki farklı yılda toplanarak (2009-2010) tohumların ve tohum yağlarının ayrı ayrı fiziksel ve kimyasal analizleri yapılarak, kapari tohumlarının yağ kalitesi ve yemeklik yağ olarak kullanılabilirliği araştırılmıştır.
Tür ve çeşitleri belirlenen, kapari tohumları üzerinde yapılan fiziksel ve kimyasal analizlerde C. spinosa ve C. ovata türlerinde sırasıyla; ham yağ (% 27.74 – 32.54), selüloz (% 28.14 – 29.67), kül (% 2.13 – 2.23), radikal aktivite (% 83.482 – 83.718), toplam fenolik madde içeriği (1.76 mg/kg - 1,98 mg/kg) ve toplam mineral madde miktarı (19514.60 ppm – 16995.92 ppm), tohumlardan elde edilen ham yağlarda ise sırasıyla ortalama; yağ asitleri kompozisyonu (doymuş yağ asitleri % 15.05 – 9.45, doymamış yağ asitleri % 82 - 91), palmitik asit (% 10.01 - 5.66), oleik asit (% 44.75 – 39.20), linoleik asit (% 35.16 – 48.51), linolenik asit (% 0.45 – 0.60), özgül ağırlık (0.929 – 0.934), kırılma indisi (20 °C) (1.463 – 1.466), viskozite (22 °C) (44.450 mPa - 37.545 mPa), renk ( L* 39.66-43,13, a* 10.53 – 20.55, b* 0.17-24.20), erime noktası (- 15.8 °C, -17.2 °C), sabunlaşmayan madde sayısı (% 2.21 – 2.50), sabunlaşma sayısı (193.31 mg/g - 192.13 mg/g), radikal aktivite (% 29.78 – 26.09), α–tokoferol içeriği (3.87 – 2.63 mg/100gr ), toplam fenolik madde içeriği (1.102 mg/g – 0.642 mg/g), sterol kompozisyonu (3220 mg/kg - 3298 mg/kg), wax değeri (211 ppm - 231 ppm) ve mineral madde miktarı (1969.56 ppm -2170.17 ppm) ortalama değerleri tespit edilmiştir.
Sonuç olarak; Türkiye‟de geniş bir alanda bol miktarda tespit edilen, C. spinosa ve C. ovata türlerine ait kapari bitkisi tohumlarının, insan sağlığı açısından besleyici öneme sahip besin maddelerini yüksek oranda içerdiği tespit edilmiştir. Tohum yağlarının Türk Gıda Kodeksi Bitki Adı ile Anılan Yemeklik Yağlar Tebliği‟ne uygun olduğu (Ek-17, 18, 19) ve yemeklik yağ olarak kullanılabileceği belirlenmiştir. Ayrıca yüksek serbest yağ asitliği, peroksit sayısı, wax ve renk gibi değerlerinden dolayı, ayçiçeği, mısır ve kanola yağlarında olduğu gibi rafinasyon işlemine tabi tutulması önerilmektedir.
5.2. Öneriler
Bu sonuçlar doğrultusunda;
1- Tarafımızdan yapılan araştırma da en/boy oranına göre kapari tohumlarının şeklinin C. ovata türlerinde hafif yuvarlak, C. spinosa türlerinde ise eliptik şekilde olduğu ve renklerinin de griden-kahverengiye doğru değiştiği gözlenmiştir. Tohumların en/boy oranlarının 1‟e yakın olması, bu tohumların işlemesini kolaylaştırabilir.
2- C. spinosa tohumların bintane ağırlıklarının, C. ovata tohumlarının bintane ağırlıklarından genel olarak fazla olduğu belirlenmiştir. Ayrıca, kapari tohumların en ve boy uzunlukları arttıkça, bintane ağırlıklarının da arttığı gözlenmiştir.
3- Genel olarak C. spinosa meyvelerinin kabuk/iç ağırlık oranlarının, C. ovata meyvelerinin kabuk/iç ağırlığı oranlarından yüksek olduğu belirlenmiştir. Bu durum bize C. spinosa meyvelerinin daha kalın bir kabuğa sahip olduğunu göstermektedir. Bu sonuçlara paralel olarak, kabuk/iç ağırlığı oranları ile meyvedeki tohum sayısı karşılaştırıldığında, kabuk/iç ağırlığı oranı arttıkça, tohum sayısının azaldığı tespit edilmiştir.
4- Araştırma sonuçlarımız göstermektedir ki; dünyada ve ülkemizde fazla miktarda bulunan kapari bitkisinin tohumları, ortalama % 20 protein, % 30-32 yağ, % 29 selüloz, % 2.13-2.23 kül, 1.76 mg/g-1.98 mg/g fenolik madde ve 16995.92 ppm - 19514.60 ppm arası mineral madde içermektedir. Bu nedenle kapari tohumları, insanların beslenme ihtiyaçlarını karşılaması ve insan sağlığı açısından, çeşitli amaçlar ile kullanılması önerilmektedir.
5- Araştırma sonucumuza göre, kapari tohum yağları yüksek serbest yağ asitliği (% 6.36 - 7,23), peroksit (2.82 meq/kg – 1.37 meq/kg ve renk (L* 39.66-43.13, a* 10.53 – 20.55, b*
0.17-24.20) değerlerine sahip olduklarından dolayı, ham kapari yağının doğrudan insan gıdası olarak tüketilmesi mümkün olmadığından dolayı, rafinasyon işlemi uygulaması ile Türk Gıda Kodeksinde belirlenmiş olan standartlara indirildikten sonra tüketilmesi önerilmektedir.
6- Kapari tohum yağlarının özgül ağırlık (0.929 – 0.934 g/lt), kırılma indisi (1.463 – 1.466 nD20) ve iyot sayısı değerlerinin (104.51- 121.70), sabunlaşma sayısı
(193.31 mg/g-192.13 mg/g) diğer yemeklik bitkisel yağlar (ayçiçeği, mısır, fındık, kanola, pamuk) ile paralel olduğu tespit edilmiştir.
7- Kapari tohum yağlarını, yağ asidi kompozisyonu açısından incelediğimizde, özellikle doymamış yağ asitleri (% 82-91) ve esansiyel yağ asitleri yönünden zengin
olduğu görülmektedir. Bu özelliklerinden dolayı, kapari tohum yağlarının, beslenme, kozmetik ve endüstriyel açıdan önemli olabileceği düşünülmektedir.
8- Ayrıca, yaygın olarak kullanılan ayçiçeği yağı ile kapari yağını yağ asitleri kompozisyonu bakımından kıyasladığımızda, ayçiçeği yağının palmitik asit (% 7.9- 12.0), stearik asit (% 4.5-6.7), oleik asit (% 34.4-45.5), linoleik asit oranı (% 36.9-47.9) iken (Yazıcıoğlu ve Karaali, 1983), tarafımızdan yapılan araştırma da kapari tohum yağlarının olan palmitik asit (%5-6), stearik asit (%2-3), oleik asit (%32-49), linoleik asit (%28-56) saptanmıştır. Bu karşılaştırma kapari tohumu yağı ile ayçiçeği yağının, yağ asidi kompozisyonunun paralel olduğunu göstermektedir.
9- Kapari tohum yağlarını, sterol kompozisyonu açısından incelediğimizde, C. spinosa ve C. ovata türlerinde tespit edilen ortalama 3220 mg/kg -3298 mg/kg oranlar, bu yağın beslenme, sağlık ve ekonomik açıdan kapari tohumlarının iyi bir fitosterol kaynağı olduğunu göstermektedir.
10- Kapari tohum yağının zengin, α-tokoferol (2.63-10.81 mg/100g) içeriğine sahip olması, hem yağların stabilizasyonu ve oksidasyona karşı dayanıklılığı açısından, hem de sağlık açısından doğal potansiyel bir bitkisel yağ kaynağı düşünülebilir.
11- Araştırma sonucumuza göre, kapari tohum ve tohum yağlarını toplam fenolik madde ve radikal aktivite yönünden kıyasladığımızda; kapari tohumlarında toplam fenolik maddenin, tohum yağlarına oranla daha fazla olduğu ve buna paralel olarak da radikal aktivitenin kapari tohumlarında, yağlara göre daha fazla olduğu tespit edilmiştir. Bu nedenle kapari tohumlarının gıda veya ilaç olarak endüstride kullanılması önerilmektedir.
12- Kapari tohumlarının ve tohum yağlarının özellikle Ca, K, Mg, Na, S mineralleri yönünden zengin olduğu, fakat kapari tohumlarının, yağlara göre daha fazla mineral madde içerdiği belirlenmiştir. Mineral madde yönünden de zengin olan kapari tohum ve yağlarının kemik ve dişlerin gelişimi, sinir sistemi ve kasların düzenli çalışması ile besleyicilik açısından tüketimi önerilmektedir.
13- Yaptığımız araştırmada, kapari bitkisinin tohum ve tohum yağlarının, özgül ağırlık hariç, tüm fiziksel ve kimyasal özelliklerinin bitkinin çeşiti, toplandığı lokasyon ve yıla göre değiştiği istatistiki olarak p < 0.01 düzeyinde önemli tespit edilmiştir. Bu nedenle kapari bitkisinin yetiştirilmesi sırasında, bu özelliklerin dikkate alınması önerilmektedir.
KAYNAKLAR
Abbassi, A.R., Hajırezeaı, M., Hofıus, D., Sonnewald, U. and Voll, L.M., 2007, Specific role of a- and g-tocopherol in abiotic stres responses of transgenic tobacco, Plant Physiol., 143, 1720–1738.
Abidi, S.L., 2001, Chromatographic analysis of plant sterols in foods and vegetable oils, J. Chrom. A., 935: 173 - 201.
Acar, H., Üçler, A.Ö., Ölmez, Z., 2002, Artvin yöresi orman yol evlerinde doğal olarak bulunan kapari (Capparis ovata Desf.)'nin gelişiminde etkili olan faktörler, cilt: 10 sayı: 43, 1-4.
Afsharypuor, S., Jeiran, K., Jazy, A. A., 1998, First investigation of the flavour profiles of the leaf, ripe fruit and root of Capparis spinosa var. mucronifolia from Iran, Pharnraceutica Acta Helvetiae, 72, 307-309.
Ahmed, Z. F., Rizk, A. M., Hammouda, F. M., Seif-Nasr, M.M. 1972, Glucosinolates of Egyptian Capparis species, Phytochem., 11, 251-256.
Akan, H., Eker, İ., Aslan, M., 2004, Kapari (Keber) bitkisinin GAP bölgesindeki ihracatı ve son popülasyon durumu, XVII. Biyoloji Kongresi, 21-24 Haziran, Adana.
Akanni, M. S, Adekunle, A.S, Oluyemi, E.A., 2005, Physicochemical properties of some non-conventional oil seeds, J. Food Technol., 3:177–181.
Akgül, A ve Özcan M., 1995, Kapari (Capparis spp.): Hammadde bileşimi ve ürün İşleme desueleri. Workshop; Tıbbi ve Aromatik Bilgiler, 25-26 Mayıs. Ege Üni. Zir. Fak. Bornova, İzmir.
Akgül, A.,1996, Yeniden keşfedilen lezzet: Kapari (Capparis spp.), Gıda 21, 119-128. Akgül, A. and Özcan, M.,1999, Some compositional characteristics of capers (Capparis
spp.) seed and oil, Grasas y Aceites, 50 (1), 49-52.
Akın, A. ve Akdişli, A., 2010, Emir, Gök Üzüm ve Kara Dimitri üzüm çeşitlerinin çekirdek yağlarının yağ asidi kompozisyonu ve fenolik madde içeriklerinin belirlenmesi, Akademik Gıda, 8(6) (2010) 19-23.
Aktan, N., Bilgir, B., Elgin, E., 1981, Pickling product and keeping of capers flower buds. Ege Univ. Agrie. Fac. J,. 18, 259-273.
Aktan, N. ve Yücel, H., 1998, Turşu Teknolojisi, E.Ü. Ege MYO Yayınları, 23:138 s. Angelini, G. V, Filotico, A.G, Foti R, Gandolfo, M., 1991, Allergic contact dermatitis
from Capparis Spinosa L. applied as wet compresse, J Contact Dermat., 24, 382- 383.
Anonim, 1970b, Türk Standartları Enstitüsü, Özgül ağırlık tayini standardı-894. Anonim, 1970c, Türk Standartları Enstitüsü, Refraktif indeks analizi standardı-894. Anonim, 1986, Türk Standartları Enstitüsü, Sabunlaşmayan maddeler tayini standardı
-4963.
Anonim, 1997, Erozyona karşı köklü çözüm kapari. Orman Bakanlığı Araştırma ve Erozyon Kontrolü Genel Müdürlüğü. Çeşitli Yayınlar Serisi No:2 Ankara.
Anonim, 2003, TKB Ankara İl Kontrol Laboratuvar Müdürlüğü, Ham protein tayini Döküman Kodu: Yem. MT.004/P13, 05.11.2003.
Anonim, 2005. TKB Ankara İl Kontrol Laboratuvar Müdürlüğü 2005. Kül tayini Döküman Kodu: Fal. MT058 /P13, 11.05.2005.
Anonim, 2012, TKB Bitki adı ile anılan yemeklik yağlar tebliği, İnternet Kaynağı, web: www.kkgm.gov.tr/TGK/Teblig/, (Ziyaret Tarihi: 10.01.2012).
Anonymous, 1971a, American Oil Chemists‟ Society Melting point in oil, Ofical method Cc 1-25, Volume-1.
Anonymous, 1971b, American Oil Chemists‟ Society Iodine number in oil, Ofical method Cd 1c-85, Volume-1.
Anonymous, 1971c, American Oil Chemists‟ Society Sapoinable number in oil, Ofical method Cd 30-94 Volume-1.
Anonymous, 1971d, American Oil Chemists‟ Society Wax in oil, Ofical method Cc 11-53 Volume-1.
Anonymous, 1977, Medicinal Flora of Xinjiang”, Xinjiang People's Publishing House, Urumuqi, 74–75.
Anonymous, 1989a, American Oil Chemists‟ Society Fatty acid composition by GC, cis and trans isomers, Ofical Method Ce c-89 (93), Volume-1.
Anonymous, 1989b, American Oil Chemists‟ Society Free fatty acids, Offical Method Ca 5a-40 (93), Volume-1.
Anonymous, 1989c, American Oil Chemists‟ Society Peroxide value, Offical Method Cd8-53 (93), Volume-1.
Anonymous, 2000, Official Methods of Analysis of AOAC International (17th ed.). AOAC International Suite Suit 500, 481 North Frederick Avenue Gaithersburg. Maryland, 2417-2877, USA.
Appelquist, L. A., Kornfeldt A. K., Wennerholn J.E., 1981, Sterols and steryl esters in some brassica and sinapsis seeds, Phytochemistry, 20: 207-210.
Arnaud, J., Fortis, I., Blachier, S., Kia, D., Favier, A., 1991, Simultaneous determination of retinol, alpha-tocopherol and beta-carotene in serum by isocratic high-performance liquid chromatography, J. Chromatogr., Dec 6, 572 (1-2):103- 16.
Arslan, D., 2004, Kapari (Capparis ovata var. canescens) çiçek tomurcuklarının kontrollü şartlarda salamura ürüne işlenmesi, Yüksek Lisans Tezi, syf: 70. Selçuk Üni. Fen Bilimleri Ens., Gıda Müh. Anabilim Dalı, Konya.
Awad, A. B., Fink, C.S., 2000, Phytosterols as anticancer dietary components: evidence and mechanism of action. J. Nutr., 130: 2127-2130.
Awad, A.B., Barta, S.L., Fink C.S., Bradford, P.G., 2008, Beta-Sitosterol enhances tamoxifen effectiveness on breast cancer cells by affecting ceramide metabolism. Mol. Nutr. Food Res., 52: 419-26.
Ayerza, R., 1995, Oil content and fatty acid composition of chia (Salvia hispanica L.) from five northwestern locations in Argentina. J.A.O.C.Soc., 72, 1079–1081. Barbera, G., Di Lorenzo, R., Barone, E., 1991, Observations on Capparis populations
cultivated in Sicily nd on their vegatative and productive behaviour, Agric. Mediter., 121,32-39.
Baytop, T.1984.,Treatment with Plants in Turkey, Publication Number 3255, İstanbul University, İstanbul, Turkey.
Berganza, B.E., Moran, A.W., Rodriguez, G.M ., 2005, Effect of variety and location on the total fat, fatty acids and squalene content of amaranth. Plant Foods Hum. Nut., 58: 1-6.
Bektaşoğlu, B., 2007, Hidroksil radikal süpürülmesine dayalı antioksidan aktivite ölçümünde yeni bir yöntem geliştirilmesi, Yüksek Lisans Tezi, İstanbul Üniversitesi, Kimya Anabilim Dalı., Haziran 2007.
Bieri, J.G., 1984, Sources and consumption of antioxidants in the diet, J.A.O.C.S., Dec: 61(12) 1917-17.
Bilaloğlu, G.V., Harmandar, M., 1999, Flavonoidler, Bakanlar matbaacılık Ltd.Şti. p.336-343, İstanbul.
Bilgin, M., 2004, Kapari yurtiçi piyasa ve ürün araştırması, İstanbul Ticaret Odası, Dış Ticaret Şubesi T.C Tarım ve Köyişleri Bakanlığı Bitkisel Üretim, Özel İhtisas Komisyonu Raporu.
Bouic, P. J, 2001, The role of phytosterols and phytosterolins in immune modulation: a review of the past 10 years, Curr. Opin. Clin, Nutr. Met. Care., 4, 471-475.
Brand-Williams, W., Cuveier, M.E. and Berset, C., 1995, Use of a free radical method to evaluate antioksidant activity. LWT-Food Sci. Technol., 28, 25-30.
Breene, W. M., Lin, S., Hardman ,L, Orf. J., 2007, Protein and oil content of soybeans from different geographic locations, J Am. Oil Chem Soc., 65, 1927–1931.
Brevard, H., Brambilla M., Chaintreau, A and Marion J-P., 1992, Occurrence of elemental sulphurn in capers and first ınvestigation of the flavour profile, Flav Frag J., 7,313-321.
Britannica., 1994, Encyclopaedia Britannica, Inc. (UK) Ltd 2nd Flor, Unity Wharf, Mill Street, London SE1 2BH, United Kingdom.
Calış, I., Kuruuzum, A., Ruedi, P., 1999, 1H-indole-3-acetonitrile glycosides from Capparis spinosa fruits, Phytochemistry, 50, 1205–8.
Calpe, L., Escol, C., Blanco, F., 2009, New insights into the molecula ractions of plant sterols and stanols in cholesterol metabolism. Atherosclerosis, 203: 18-31.
Carelli, A. A., Frizzera, L. M., Forbita, P.R., and Crapista, G.H., 2002, Wax composition of sunflower seed oils, J. A. O. C. S., Vol.79, No.8.
Carrera, F., Leon, M., Pablos F., Gonzales, A.G., 1998, Authentication of green coffee varieties according to their sterolic profile, Anal. Chim. Acta., 370, 131-139. Cherry, J.H., Bishop, L., Hasegawa, P.M. and Leffler, H.R. 1985, Differences in the
fatty acid composition of soybean seed produced in northern and southern areas of the U.S.A. Phytochemistry, 24, 237–241.
CIE., 1976, International Commission on Illumination Colorimetry: Official recommendations of the international commission on illumination. Publication CIE No.15 (E-1.3.1) Paris, France: Bureau Central de la CIE.
Coşge, B., Gürbüz, B., Söyler, D., Şekeroğlu, N., 2005, Kebere (Capparis spp.) yetiştiriciliği ve önemi, Bitkisel Araştırma Dergisi, 2, 29–35.
Damizadeh, R., 2004, Seed extraction from ripe and unripe fruits of caper tree and effects of different seed treatments and pot mix on their germination and seedling survival, Iranian journal of forest and poplar research, 12 (2), 185-199.
Darmstadt, G.L., Mao-Qiang, M., Chi, E., et al., 2002, Impact of topical oils on the skin barrier: Possible implications for neonatal health in developing countries, Acta Paediatr, 91 (5): 546-554.
Daulatabad, CMJD., Desai, V.A., Hoshmani, K.M., 1991, New source of oil with novel fatty acids for industrial utilization, Ind Eng Chem Res., 1991;30: 2596–8. Davis, P.H., 1965, Flora of Turkey and the East Aegean Islands, Edinburgh Univ. press
Vol. 1-9. Edinburgh.
De Feo, V., Senatore, F., 1993, Medicinal plants and phytotherapy in the Amalfitan Coast Salerno Province, Campania, Southern Italy, Journal of Ethnopharmacology, 39,39-51.
De Man, J.M., 1999, Principles of food chemistry, Gaithersburg, Aspen Publishers Inc. Doğan, Y., Başlar, S., Ay, G., Mert, H. H., 2004, The use of wild edible plants in
western and central anatolia in Turkey, Economic Botany, 58 (4), 684-690.
Dulau, I., Thebaudin, J.Y., 1998, Functional properties of leguminous protein: applications in food. Grain Leg., 20: 15-16.
Dursun, E. and Dursun, I., 2005, Some physical properties of caper seed, Biosystems engineering, 92 (2), 237-245.
Ehringera, W.D., Belchera, D., Wassallb, S. and Still, W., 1991, A comparison of a- linolenic acid (18:30w3) and g-linolenic acid (18:3w6) in phosphatidylcholine bilayers. Chem. Phys. Lipids, 57, 87–96.
Falade, O.S., Adekunle, A.S., Aderogba, M.A., Atanda, S.O., Harwood, C. and Adewusi, S. R., 2008, Physicochemical properties, total phenol and tocopherol of some Acacia seed oils, J. Sci. Food Agric., 88, 263–268.
Faustman, C. and Cassens, R. G., 1990, The biochemical basis for discolouration in fresh meat: a review, Journal of Muscle Foods, 1, 21 l-243.
Fernandez, C., Suarez, Y., Ferruelo, A.J., Gomez-Coronado, D., Lasuncion, M.A ., 2002, Inhibition of cholesterol biosynthesis by Delta 22-unsaturated phytosterols via competitive inhibition of sterol Delta 24-reductase in mammalian cells, Biochemistry, J., 366, 109-19.
Gaind, K. N., Gandhi, K. S., Juneja, T. R., 1975, 4,5,6,7-Tetrahydroxydecyl ısothiocyanate derived from a glucosinolate in Capparis Grandis, Phytochemistry, 14,1415-1418.
Gauvin, A., Smajda, J., Aknin, M., Gaydon, M,E., 2004, SteRol composition and chemotaxonomie considerations in relation to sponges of the genus Xestospongia, Biochem. Syst. Ecol., 32: 469-476.
Germanò, M. P., De Pasquale, R., D'Angelo, V., Catania, S., Silvari, V., Costa, C.,2002, Evaluation of extracts and isolated fraction from Capparis spinosa L. buds as an antioxidant source, J. Agric. Food Chem., 50 (5), 1168–1171.
Gerschman, K., Gilbert D., Nye S., Dwyer P., Fenn W., 1954, Oxygen poisoning-X irradiation: a mechanism in common, Science, 119, 623-626.
Georing, C.E., Schwab, A.W., Daughurt, M.J., 1982. “Fuel properties of eleven vegetable oils”, Transactions of ASAE.
Glushenkova, A. I ., Ul‟chenko, N. T., Bekker N. P., 2008, Neutral lipids from seeds of Asteraceae Plants, Chemistry of Natural Compounds, 44 (2).
Gökalp, H.Y., Nas, S., Certel, M., 1992, Biyokimya 1. Temel Yapılar Ve Kavramlar. Pamukkale Üni. Mühendislik Fak. Ders Kitapları Yay., No: 001, Denizli.
Gökalp, H.Y., Nas, S., Ünsal, M., 2001, Bitkisel Yağ Teknolojisi, Pamukkale Üni. Mühendislik Fak. Ders Kitapları Yayın No:005. Denizli.
Gray, J.J., 1978, Measurement of lipid oxidation: A Review, J.A.O.C.S., 55:539–546. Grunwald, C., 1975, Plant sterols, Ann. Rev. Plant Physiol., 26: 209 236.
Guéguen, J., Lemarié, J., 1996. Composition, structure et propriétés physiologiques des protéines légumineuses et d'oléagineux, In: B.Godon, Editor, Protéines végétales, Lavoisier, Paris, pp. 1-40.
Gupta, A. S., Chakrabarty, M. M., 1964, Composition of the seed fats of the Capparidaceae family, Journal of the Science of Food and Agriculture, 15, 69– 73.
Gurbet, F., 2009, Kapari Bitkisi [online], Gıda Kontrolörü, İl Tarım Müdürlüğü
Koruma Kontrol Şube Müdürlüğü, Meram/ Konya,
http://www.konkoyder.org/kapari.pdf [Ziyaret Tarihi: 28 Nisan 2011].
Gutterıtge, J. M. C., Rowley, D. A., Hallıwell, B., 1981, Süperoxide-dependent formation of hidroxyl radicals in the presence of iron salts, Biochemical Journal, 199, 263-265.
Haciseferoğulları, H., Özcan, M,M., and Duman, E., 2011, Biochemical and technological properties of seeds and oils of Capparis spinosa and Capparis ovata plants growing wild in Turkey. J Food Process Technology, 2:6.
Harper, J. L., 1970, The shapes and sizes of seeds. Ann. Rev. Ecol. Sys.,1, 327-356. Hendricks, H.F.J., Weststrate, J.A., Vabvliet, T., Meijer, G.W., 1999, Spreads enriched
with three different levels of vegetable oil sterols and the degree of cholesterol lowering in normocholesterolaemic and mildly hypercholesterolaemic subjects. Eur. J. Clin. Nutr., 53, 319-327.
Hışıl, Y.,2004, Enstrümantal Gıda Analizleri-II 4. Baskı, Ege Üniversitesi Mühendislik Fakültesi Ders Kitapları, Yayın No:45, Bornova, 39s., İzmir.
Ho, S. S., Pal, S., 2005, Margarine phytosterols decrease the secretion of atherogenic lipoproteins from Hep G2 liver and Caco 2 intestinal cells. Atherosclerosis, 182: 29-36.
Hong-Jinl, B., Liu, W.-J., Zhao, X.-L., Tian, X., 2007, Analysis of the compositions and contents of seed oil and aminoin the aerial parts of Capparis Spinosa, Food Research and Development, 2007-06.
Inocencio, D., Rivera, F., Alcaraz, F., Calderón F.,Tomás-Barberán, F., 2000, “Flavonoid content of commercial capers (Capparis spinosa, C. sicula and C.
orientalis) produced in mediterranean countries”, European Food Research and Technology, 212, 70–74.
Inocencio, D., Rivera, F., Obón, C., Alcaraz, F., Barreña, J., 2006, A systematic revision of Capparis section Capparis (Capparaceae), Annals of the Missouri Botanical Garde., 93, 122–149.
Ivanov, S.A. and Aitzetmuller, K., 1995, Untersuchungen uber die tocopherol- und tocotrienol-zusammensetzung der samenole einiger vertreter der familie apiaceae, Fat. Sci. Technol., 97, 24–29.
İlyasoğlu, H. ve Özçelik, B., 2011, Memecik Zeytinyağlarının Biyokimyasal Karakterizasyonu, Gıda 36 (1), 33-41.
Jackson, M.A., Eller, F.J., 2006, Isolation of long-chain aliphatic alcohols from beeswax using lipase-catalyzed methanolysis in supercritical carbon dioxide. J Supercrit Fluids, 37, 173–177.
Jiang H., Lib, X., Ferguson, D. K., Wanga, Y.-F., Liu, C.-J., Lia, C.-S., 2009, Study on the chemical components of fatty acid and total flavone content from Capparis spinosa fruit, Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2009-01.
Kalcas, E., 1974, Food from the fields, Edible wild plants of Eagean, Turkey- İzmir Birlik Matbaası.
Kan, Y. ve Arslan, N., 2002, Konya‟ da doğal olarak yetişen kapari (Capparis ovata Desf. Var. Canescens (coss.) Heywood)‟ de bazı fenolojik ve morfolojik özelliklerüzerine bir araştırma, 14. Bitkisel İlaç Hammaddeleri Toplantısı, Bildiriler, 29-31Mayıs 2002, Eskişehir.
Kanthamanı, S., Narayanan, C.R., Venkataraman, K., 1960, Isolation of l-stachhydrine and rutin from the fruit of Capparis. J. Sci. Indust. Res. India, Sect., B: 409-411. Karleskind, A. and Wollf, J.P., 1996, Oils and Fats Manual; Lavoisier Tec and Doc,
Paris, France. 1: p. 806.
Kaur, M and Singh, N., 2007, Characterization of protein isolates from different Indian chickpea (Cicer arietinum L.) cultivars, Food Chem., 102:366–374.
Kayahan, M., 1975, Yağlarda meydana gelen oksidatif bozulmalar ve önleme çareleri, Ankara Üni. Zir. Fak. Yayınları: 601. Derleme Syf: 14-18. Ankara.
Kjaer, A. and Thomsen, H., 1963, Isothiocyanate-producing glucosides in species of Capparidaceae, Phytochem., 2:29-32.
Khurdiya, D.S., Kumar, S.S. (1969). Acceptability of kair (Capparis decidua pax) pickles made in various styles. I. Effect of maturity of fruit and crushing of fruit on the organoleptic quality of kair pickle, Indian, Food Packer, 23,1-3.
Kiritsakis, A., Christi, W.W., 2000, Analysis of edible oils. In handbook of olive oil: analysis and properties; Harwood JL, Apancio R, Eds.; Aspen: Gaithersburg, MD. pp. 159-208.
Krannitz, P.G.,1997, Seed weight variability of antelope bitterbrush , Purshia tridentata: Rosaceae, American Journal of Botany, 84: 1738B1742.
Lajara, J.R., Diaz, U. and Quıdıello, R. D., 1990, Definite influence of location and climatic conditions on the fatty acid composition of sunflower seed oil. J. Am. Oil Chem., Soc. 67, 618–623.
Lavedrine, F., Ravel, A., Poupard, A. and Alary, J. 1997, Effect of geographic origin, variety and storage on tocopherol concentrations in walnuts by HPLC, Food Chem., 58, 135–140.
Letawe, C., Boone, M. and Pierard, G.E., 1998, Digital image analysis of the effect of topically applied linoleic acid on acne microcomedones. Clin. Exp. Dermatol. 23, 56–58.
Law, M., 2000, Plant sterol and stanol margarines and health. Brit. Med. J., 320, 861– 864.
Lazaridio, A., 2004, Composition thermal and rheological behaviour of selected Grek honeys, Journal of Food Engineering, 64, 9-21.
Lechner, M., Reiter, B., Lorbeer, E., 1999, „Determination of tocoferols and sterols in vegatable oils by solid phase extraction and subsequent capilarry gas chromatogrophe analysis‟., J. Chrom. A., 857, 231-238.
Lee, S. K., Mbwambo, Z. H., Chung, H. S., Luyengi, L., Games, E. J. C., and Mehta, R. G. 1998, Evaluation of the antioxidant potential of natural products, Combinational Chemistry and High Throughput Screening, 1, 35-46.
Lehmler, H. J. and Bummer, P.M., 2002, Behavior of 10-(perfluorohexyl)-decanol, a partially fluorinated analog of hexadecanol, at the air–water interface, J Fluorine Chem., 28, pp. 17–22.
Levizon, E., Drilias, P., Kyparissis, A., 2004, Exceptional photosynthetic performance of Capparis spinosa L. under adverse conditions of Mediterranean summer, Photosynthetica, 42: 229-235.
Liisulu, K., 1973, Oil plants and breeding., Caglayan Bookshop, Istanbul.
Liu, X. , Maeda, S., Hu, Z., Aiucht, T., Nakaya, K. and Kurihara, Y., 1993, Purification, complete amino acid sequence and structural characterization of the heat-stable sweet protein, mabinlin II, Eur J Biochem., 211, pp. 281–287.
Mailler, R.J., Ayton, J. and Graham, K., 2010, The Influence of growing region, cultivar and harvest timingon the diversity of Australian olive oil, J.Am. Oil Chem. Soc., 87, 877-884.
Matthäus, B.and Özcan, M., 2002, Glucosinolate composition of young shoots and flower buds of capers (Capparis species) growing wild in Turkey, J. Agric. Food Chem., 50, (25), 7323–7325.
Matthäus, B and Özcan, M., 2005, Glucosinolates and fatty acid, sterol, and tocopherol composition of seed oils from Capparis spinosa var. spinosa and Capparis ovata Desf. var. canescens (Coss.) Heywood, J. Agric. Food Chem., 53 (18), 7136– 7141.
Matthäus, B and Özcan, M.M. 2009, Chemical evaluation of some paprika (Capsicum annuum L.) seed oils. European Journal of Lipid Science and Technology, 111(12), 1249 – 1254.
Mc Guire, R. G., 1992, Reporting of objective color measurements, Hortscience, 27 (12), 1254-1255.
Mohamed, HMA., Awatif II, 1998, The use of sesame oil unsaponifiable matter as a natural antioxidant. Food Chem., 62, 269-276.
Mongrand, S., Badoc, A., Patoulle, B., Lacomblez, C. H., Chavent, M., Cassagne, C. and Bessoule, J. J., 2001, Taxonomy of gymnospermae: Multivariate analyses of leaf fatty acid composition, Phytochemistry, 58, 101–115.
Montedoro, G., Servili, M., Baldioli, M., Miniati, E., 1992, Simple and hydrolyzable