• Sonuç bulunamadı

BÖLÜM 3: SAMEK KURSLARININ ETKİNLİĞİ ÜZERİNE AMPİRİK

3.8. Çapraz Tablo Analizleri

theobromae

Nosso estudo mostrou uma aparente sobreposição de respostas em plantas de cajueiro infectadas com o L. theobromae. Essa observação se apoia no fato de que tanto plantas inoculadas do clone BRS 226 (resistente), quanto à progênie desse clone, cultivada em condições de campo, induzem mudanças fisiológicas no perfil de expressão das proteínas associadas ao metabolismo e produção de energia, estresse e defesa, sinalização celular e metabolismo/enovelamento de proteínas. Entre as proteínas diferencialmente expressas em plantas de cajueiro cultivadas em condições de campo, 76% delas pertencem às categorias citadas e que, por sua vez, foram diferencialmente reprogramadas nas plantas do clone BRS 226 infectadas (Figura 14A).

Interessantemente, além da alteração fisiológica de processos biológicos comuns, a identidade compartilhada entre 6 proteínas diferencialmente reguladas, reforça essas observações, sugerindo sobreposição e fornecendo consequente validação da reprogramação em reposta a presença de L. theobromae, uma vez que, as plantas de cajueiro analisadas nesses dois cenários compartilham este estresse biótico comum. Curiosamente, como discutido acima, outros fatores abióticos e bióticos, propensos em condições de campo, parecem alterar o padrão de expressão evidenciado em plantas classificadas como resistentes, quando comparado ao clone BRS 226 inoculado.

A sobreposição, por análise proteômica comparativa de ecótipos resistentes e suscetíveis de trigo, revelou a reprogramação de proteínas envolvidas nas mesmas funções celulares, quando plantas pertencentes a estes grupos foram infectadas com o vírus SCMV (Sugarcane mosaic virus). Os dados mostrados discutem uma possível expressão de proteínas marcadoras de infecção, em plantas de trigo, com o vírus SCMV (WU et al., 2013).

Assim, a identidade comum de 6 proteínas (frutose-bifosfato aldolase, Hsp20- chaperona, proteínas 14-3-3, subunidade beta do proteassoma e duas anexinas) apresentadas nessa presente investigação, em especial daquelas envolvidas com sinalização celular (anexinas e 14-3-3), parecem revelar possíveis alvos das respostas celulares envolvidas na interação cajueiro-L. theobromae.

6. CONSIDERAÇÕES FINAIS

Mudanças no proteoma caulinar de plantas de cajueiro infectadas com L. theobromae sugerem possível percepção do patógeno, seguido por alterações fisiológicas que induzem à expressão diferencial de proteínas envolvidas em diversos processos celulares.

A possível ativação/supressão em componentes de vias biológicos do metabolismo, produção de energia, sinalização celular ou induzidas sob estresse, em especial o oxidativo, foram igualmente observadas para plantas de cajueiro cultivadas em campo, com alta pressão do patógeno, bem como, para plantas inoculadas do clone BRS 226. A sobreposição de respostas moleculares, em especial no que concerne a proteínas envolvidas com sinalização celular, fornecem possíveis alvos resultantes da interação cajueiro-L. theobromae e reforçam os eventos moleculares observados.

Dessa forma, os dados proteômicos apresentados neste trabalho fornecem informações valiosas sobre os mecanismos biológicos subjacentes à infecção com L. theobromae e se constituem numa base inicial de resultados que podem ser, futuramente, integrados a programas de melhoramento genético do cajueiro, visando resistência, particularmente, à resinose.

REFERÊNCIAS

ABDEL-FARID I. B.; JAHANGIR, M.; VAN DEN HONDEL, C. A. M. J.; KIM, H. K.; CHOI, Y. H.; VERPOORTE, R. Fungal infection-induced metabolites in Brassica rapa. Plant Science, v. 176, p. 608-615, 2009.

ABO-OGIALA, A.; CARSJENS, C.; DIEKMANN, H.; FAYYAZ, P.; HERRFURTH, C.; FEUSSNER, I.; POLLE, A. Temperature-induced lipocalin (TIL) is translocated under salt stress and protects chloroplasts from ion toxicity. Journal of Plant Physiology, v. 171, p. 250-259, 2014.

ABRAMOVITCH, R. B.; JANJUSEVIC, R.; STEBBINS, C. E.; MARTIN, G. B. Type III effector AvrPtoB requires intrinsic E3 ubiquitin ligase activity to suppress plant cell death and immunity. Proceedings of the National Academy of Sciences, v. 103, p. 2851-2856, 2006. ABUQAMAR, S.; CHAI, M.-F.; LUO, H.; SONG, F.; MENGISTE, T. Tomato protein kinase 1b mediates signaling of plant responses to necrotrophic fungi and insect herbivory. The Plant Cell, v. 20, p. 1964-1983, 2008.

ADENIYI, D. O.; ORISAJO, S. B.; FADEMI, O. A.; ADENUGA, O. O.; DONGO, L. N. Physiological studies of fungi complexes associated with cashew diseases. Journal of Agricultural and Biological Science, v. 6, p. 34-38, 2011.

ADIE, B. A.; PÉREZ-PÉREZ, J.; PÉREZ-PÉREZ, M. M.; GODOY, M.; SÁNCHES- SERRANO, J. J.; SCHMELS, E. A.; SOLANO, R. ABA is an essential signal for plant resistance to pathogens affecting JA biosynthesis and the activation of defences in Arabidopsis. Plant Cell, v. 19, p. 1665-1681, 2007.

AEBERSOLD, R.; MANN, M. Mass spectrometry-based proteomics. Nature, v. 422, p. 198- 207, 2003.

AFROZ, A.; ALI, G. M.; MIR, A.; KOMATSU, S. Application of proteomics to investigate stress induced proteins for improvement in crop protection. Plant Cell Reports., v. 30, p. 745- 63, 2011.

AGNEW, P.; KOELLA, J. C.; MICHALAKIS, Y. Host life history responses to parasitism. Microbes and Infection, v. 2, p. 891-896, 2000.

AHMAD S.; GORDON-WEEKS R.; PICKETT J.; TON J. Natural variation in priming of basal resistance: from evolutionary origin to agricultural exploitation. Molecular Plant Pathology, v. 11, p. 817-827, 2010.

ALVES, E. S.; CARDOSO, J. E.; SILVA, L. G. C.; LIMA, J. S. Interação das condições edafoclimáticas com a resinose do cajueiro. Enciclopédia biosfera, v. 9, p. 1320-1345, 2013. AL-WHAIBI, M. H. Plant heat-shock proteins: A mini review. Journal of King Saud

ALZATE-MARIN, A. L.; CERVIGNI, G. D. L.; MOREIRA, M. A.; BARROS, E. G. Seleção assistida por marcadores moleculares visando ao desenvolvimento de plantas resistentes a doenças, com ênfase em feijoeiro e soja. Fitopatologia Brasileira, v. 30, p. 333-342, 2005. AN, C.; MOU, Z. Salicylic acid and its function in plant immunity. Journal of Integrative Plant Biology, v. 53, p. 412-428, 2011.

ANDRADE, A. Sequenciamento, identificação e análise de proteínas do caule de mudas de Eucalyptus grandis. 120p. Tese (Doutorado em Agronomia)- Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Universidade de São Paulo, Piracicaba – SP. 2006.

ANGOT, A.; VERGUNST, A.; GENIN, S.; PEETERS, N. Exploitation of eukaryotic ubiquitin signaling pathways by effectors translocated by bacterial type III and type IV secretion systems. PLoS Pathogens, v. 3, p. e3, 2007.

ARAI, Y.; HAYASHI, M.; NISHIMURA, M. Proteomic analysis of highly purified

peroxisomes from etiolated soybean cotyledons. Plant and Cell Physiology, v. 49, p. 526-539, 2008.

ARASIMOWICZ-JELONEK, M.; KOSMALA, A.; JANUS, Ł.; ABRAMOWSKI, D.; FLORYSZAK-WIECZOREK, J. The proteome response of potato leaves to priming agents and S-nitrosoglutathione. Plant Science, v. 198, p. 83-90, 2013.

ASAI, S.; YOSHIOKA , H. Nitric oxide as a partner of reactive oxygen species participates in disease resistance to necrotrophic pathogen Botrytis cinerea in Nicotiana benthamiana. Molecular Plant-Microbe Interactions, v. 22, p. 619-629, 2009.

ASSELBERGH, B.; DE VLEESSCHAUWER, D.; HOFTE, M. Global switches and fine- tuning-ABA modulates plant pathogen defence. Molecular Plant-Microbe Interaction, v. 6, p.709-719, 2008.

AXSEN, W. S.; STYER, C. M.; SOLNICK, J. V. Inhibition of heat shock protein expression by Helicobacter pylori. Microbial Pathogenesis, v. 47, p. 231-236, 2009.

BAERENFALLER, K.; MASSONNET, C.; WALSH, S.; BAGINSKY, S.;

BUHLMANN, P,; HENNIG, L. et al. Systems-based analysis of Arabidopsis leaf growth reveals adaptation to water deficit. Molecular Systems Biology, v. 8, p. 606, 2012.

BAIRD, R.; CARLING, D. Survival of parasitic anal saprophytic fungi or intact senescent cotton roots. Journal of Cotton Science, v. 2, p. 27-34, 1998.

BANERJEE, J.; MAITI, M. K. Functional role of rice germin-like protein1 in regulation of plant height and disease resistance. Biochemical and Biophysical Research Communications, v. 394, p. 178-183, 2010.

BANTI, V.; MAFESSONI, F.; LORETI, E.; ALPI, A.; PERATA, P. The heat-inducible transcription factor HsfA2 enhances anoxia tolerance in Arabidopsis. Plant Physiology, v. 152, p. 1471-1483, 2010.

BARI, R.; JONES, J. D. G. Role of plant hormones in plant defense response. Plant Molecular Biology, v. 69, p. 473-488, 2009.

BARROS, L. M. et al. Recomendações técnicas para a cultura do cajueiro anão precoce. Fortaleza: EMBRAPA/CNPAT, 1993. 65p. (EMBRAPA-CNPAT. Circular

Técnica, 1).

BARROS, L.M. Caju. Produção: aspectos técnicos/editor técnico: Embrapa

Agroindústria Tropical (Fortaleza -CE). Brasília: Embrapa Informação Tecnológica, 2002. 148 p.; (Frutas do Brasil; 30).

BAXTER, A.; MITTLER, R.; SUZUKI, N. ROS as key players in plant stress signalling. Journal of Experimental Botany, v.19, p. 1-12, 2013.

BECKERS, G. J.; SPOEL, S. H. Fine-tuning plant defence signaling: salicylate versus jasmonate. Plant Biology Stuttg, v. 8, p.1-10, 2006.

BELLÉS, J. M.; LOPEZ-GRESA, M. P.; FAYOS, J.; PALLAS, V.; RODRIGO, I.; CONEJERO, V. Induction of cinnamate 4-hydroxylase and phenylpropanoids in virus- infected cucumber and melon plants. Plant Science, v. 174, p. 524-533, 2008.

BENSCHOP, J. J.; MOHAMMED, S.; O‟FLAHERTY, M.; HECK, A. J.; SLIJPER, M.; MENKE, F. L. Quantitative phosphoproteomics of early elicitor signaling in Arabidopsis. Molecular and Cellular Proteomics, v. 6, p. 1198-1214, 2007.

BENT, A. F.; MACKEY; D. Elicitors, effectors, and R genes: the new paradigm and a lifetime supply of questions. Annual Review Phytopathology, v. 45, p. 399–436, 2007. BERGER, S.; SINHA, A. K.; ROITSCH, T. Plant physiology meets phytopathology: plant primary metabolism and plant-pathogen interactions. Journal of Experimental Botany, v. 58, p. 4019-4026, 2007.

BEZERRA, M. A.; CARDOSO, J. E.; SANTOS, A. A.; VIDAL, J. C.; ALENCAR, E. S. Efeito da resinose na fotossíntese do cajueiro anão precoce. Fortaleza: Embrapa

Agroindústria Tropical (Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 8), 2003, 11p.

BEZERRA, M. A.; LACERDA, C. F.; GOMES FILHO, E. ABREU, C. E. B.; PRISCO, J. T. Physiology of cashew plants grown under adverse conditions. Brazilian Journal of Plant Physiology, v. 19, , p. 449-461, 2007.

BHADAURIA, V.; BANNIZA, S.; WANG, L. X.; WEI, Y. D.; PENG, Y. L. Proteomic studies of phytopathogenic fungi, oomycetes and their interactions with hosts. European Journal of Plant Pathology, v. 126, p. 81-89, 2010.

BHUIYAN, N. H.; SELVARAJ, G.; WEI, Y.; KING, J. Role of lignification in plant defense. Plant Signaling & Behavior, v. 4, p. 158-159, 2009.

BIRCH, P. R.; ARMSTRONG, M.; BOS, J.; BOEVINK, P.; GILROY, E. M.; TAYLOR, R. M.; WAWRA, S.; PRITCHARD, L.; CONTI, L.; EWAN, R.; WHISSON, S. C.; VAN WEST, P.; SADANANDOM, A.; KAMOUN, S. Towards understand-ing the virulence

functions of RXLR effectors of the oomycete plant pathogen Phytophthora infestans. Journal of Experimental Botany, v. 60, p.1133-1140, 2009.

BITTEL, P.; ROBATZEK, S. Microbe-associated molecular patterns (MAMPs) probe plant immunity. Current Opinion in Plant Biology, v. 10, p.335–341, 2007.

BLUME, B.; NURNBERGER, T.; NASS, N.; SCHEEL, D. Receptor-mediated increase in cytoplasmic free calcium required for activation of pathogen defense in parsley. Plant Cell, v. 12, p.1425-1440, 2000.

BOLLER, T. Biochemical analysis of chitinases and β-1,3-glucanases. In: Molecular Plant Pathology. Edited by S.J. GURR, M. J. McPHERSON, and D. J. BOWLES, IRL Press, New York, v. 2, p. 23-30, 1992.

BOLLER, T.; FELIX, G. A renaissance of elicitors: perception of microbe-associated molecular patterns and danger signals by pattern-recognition receptors. Annual Review in Plant Biology, v. 60, p. 379-406, 2009.

BOLTON, M. D. Primary Metabolism and Plant Defense-Fuel for the Fire. Molecular Plant- Microbe Interactions, v. 22, p. 487-497, 2009.

BRADFORD, M. M. A rapid and sensitive method for quantification of micrograms quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical

Biochemistry, v. 72, p. 248-254, 1976.

BRINKER, M.; BROSCHE, M.; VINOCUR, B.; ABO-OGIALA, A.; FAYYAZ, P.; JANZ, D.; OTTOW, E. A.; CULLMANN, A. D.; SABOROWSKI, J.; KANGASJARVI, J.;

ALTMAN, A.; POLLE, A. Linking the salt transcriptome with physiological responses of a salt-resistant Populus species as a strategy to identify genes important for stress acclimation. Plant Physiology, v. 154, p. 1697-709, 2010.

BRITTON, K. O.; HENDRIX, F. F. Population dynamics of Botryosphaeria spp. in peach gummosis canker. Plant Disease, v. 70, p. 134-136, 1986.

BRUGIERE, S.; KOWALSKI, S.; FERRO, M.; SEIGNEURIN-BERNY, D.; MIRAS, S.; SALVI, D.; RAVANEL, S.; D‟HERIN, P.; GARIN, J.; BOURGUIGNON, J.; JOYARD, J.; ROLLAND, N. The hydrophobic proteome of mitochondrial membranes from Arabidopsis cell suspensions. Phytochemistry, v. 65, p. 1693-1707, 2004.

BRUNNER, F.; ROSAHL, S.; LEE, J.; RUDD, J. J.; GEILER, C. et al. Pep-13, a plant defense-inducing pathogen-associated pattern from Phytophthora transglutaminases. EMBO Journal, v. 21, p.6681–6688, 2002.

BURCH-SMITH, T. M.; SCHIFF, M.; CAPLAN, J. L.; TSAO, J.; CZYMMEK, K.; DINESH-KUMAR, S. P. A novel role for the TIR domain in association with pathogen- derived elicitors. PLoS Biology, v. 5, p. e68, 2007.

CAJUNOR. Especificações técnicas: cajueiro anão precoce. Disponível em: http://www.cajunor.com.br/noticia_detalhe.php?id=19. Acesso em: 20/12/2013. CANDIANO, G.; BRUSCHI, M.; MUSANTE, L. et al., Blue silver: a very sensitive

coloidal coomassie G-250 staining for proteome analysis. Electrophoresis, v. 25, p. 1327-1333, 2004.

CANTÚ, M. D.; CARRILHO, E.; WULFF, N. A.; PALMA, M. S. Seqüenciamento de peptídeos usando espectrometria de massas: um guia prático. Química nova, v. 31, p. 669- 675, 2008a.

CANTÚ, M. D.; MARIANO, A. G.; PALMA, M. S.; CARRILHO, E.; WULFF, N. A. Proteomic analysis reveals suppression of bark chitinases and proteinase inhibitors in citrus plants affected by the citrus sudden death disease. Phytopathology, v. 98, p.1084-1092, 2008b.

CAO, F. Y.; YOSHIOKA, K.; DESVEAUX, D. The roles of ABA in plant-pathogen interactions. Journal of Plant Research, v. 124, p. 489-499, 2011.

CAO, T.; SRIVASTAVA, S.; RAHMAN, M. H.; KAV, N. N. V. M.; HOTTE, N.; DEYHOLOS, M. K.; STRELKOV, S. E. Proteome-level changes in roots of Brassica napus as a result of Plasmodiophora brassica infection. Plant Science, v. 174, p. 97-115, 2008.

CAPLAN, J. L.; ZHU, X.; MAMILLAPALLI, P.; MARATHE, R.; ANANDALAKSHMI, R.; DINESH-KUMAR, S. P. Induced ER Chaperones Regulate a Receptor-like Kinase to

Mediate Antiviral Innate Immune Response in Plants. Cell Host & Microbe, v. 6, p. 457-469, 2009.

CARDOSO, J. E.; ARAGÃO, M. L.; BLEICHER, E.; CAVALCANTE, M. J. B. Efeito de práticas agronômicas na ocorrência da resinose do cajueiro. Fitopatologia Brasileira, v. 20, p. 242, 1995.

CARDOSO, J. E.; FREIRE, F.C. O. Doenças. In: BARROS, L. M. (Coord.). Caju produção: aspectos técnicos. Fortaleza: Embrapa Agroindústria Tropical, 2002. p. 132-136. (Frutas do Brasil, 30).

CARDOSO, J. E.; SANTOS, A. A.; ROSSETTI, A. G.; VIDAL, J. C. Relationship between incidence and severity of gummosis in semiarid northeastern Brazil. Plant Pathology, v. 53, p. 363-367, 2004.

CARDOSO, J. E.; PAIVA, J. R.; CAVALCANTI, J. J. V.; SANTOS, A. A.; VIDAL, J. C. Evaluation of resistance in dwarf cashew to gummosis in northeastern Brasil. Crop

Protection, v. 25, p. 855-859, 2006.

CARDOSO, J. E.; VIANNA, F. M. P.; CYSNE, A. Q.; FARIAS, F. C.; SOUZA, R. N. M. Clone Embrapa 51: uma alternative para resistência à resinose-do-cajueiro.

Fortaleza: Embrapa Agroindústria Tropical (Comunicado Técnico, 130), 2007, 3p.

CARDOSO, J. E.; WILKINSON, M. J. Development and characterisation of microsatellite markers for the fungus Lasiodiplodia theobromae. Summa

CARDOSO, J. E.; BEZERRA, M. A.; VIANA, F. M. P.; SOUSA, T. R. M.; CYSNE, A. Q.; F ARIAS, F. C. Ocorrência endofítica de Lasiodiplodia theobromae em tecidos de cajueiro e sua transmissão por propágulos. Summa phytopathologica, v. 354, p. 262-266, 2009a. CARDOSO, J. E.; VIANA, F. M. P.; BEZERRA, M. A.; SOUSA, T. R. M.; CYSNE, A. Q.; FARIAS, F. C. Transmissão de Lasiodiplodia theobromae, agente da resinose, em

propágulos de cajueiro. Fortaleza: Embrapa Agroindústria Tropical (Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 34), 2009 b, 21p.

CARDOSO, J. E.; VIANA, F. M. P.; FREIRE, F. C. O.; CYSNE, A. Q.; FARIAS, F. C.; CAVALCANTI, J. J. V. Manejo da resinose do cajueiro. Fortaleza: Embrapa Agroindústria Tropical (Comunicado Técnico, 154), 2009c, 3p.

CARDOSO, J. E.; CAVALCANTI, J. J. V.; CYSNE, A. Q.; SOUSA, T. R. M.; CORRÊA, M. C. M. Interação enxerto e porta-enxerto na incidência da resinose do cajueiro. Revista

Brasileira de Fruticultura, v. 32, p. 847-854, 2010.

CASTILLEJO, M. A.; AMIOUR, N.; DUMAS-GAUDOT, E.; RUBIALES, D.; JORRÍN, J. V. A proteomic approach to studying plant response to crenate broomrape (Orobanche crenata) in pea (Pisum sativum). Phytochemistry, v. 65, p. 1817-1828, 2004.

CASTILLEJO, M. A.; FERNÁNDEZ-APARICIO, M.; RUBIALES, D. Proteomic analysis by two-dimensional differential in gel electrophoresis (2D DIGE) of the early response of Pisum sativum to Orobanche crenata. Journal of Experimental Botany, v. 63, p. 107-119, 2012.

CAVALCANTI, M. L. F.; FERNANDES, P. D.; GHEYI, H. R.; JÚNIOR, G. B. Fisiologia do Cajueiro Anão precoce submetido à estresse hídrico em fases fenológicas . Revista de

Biotecnologia e Ciências da Terra, v. 8, p.42-53, 2008.

CEITA, G. O.; MACÊDO, J. N. A.; SANTOS, T. B.; ALEMANNO, L.; GESTEIRA, A. S.; MICHELI, F.; MARIANO, A. C.; GRAMACHO, A. P.; SILVA, D. C.; MEINHARDT, L.; MAZZAFERA, P.; PEREIRA, G. A. G. Involvement of calcium oxalate degradation during programmed cell death in Theobroma cacao tissues triggered by the hemibiotrophic fungus Moniliophthora perniciosa. Plant Science, v. 173, p. 106-117, 2007.

CITOVSKY, V.; ZALTSMAN, A.; KOZLOVSKY, S. V.; GAFNI, Y.; KRICHEVSKY, A. Proteasomal degradation in plant-pathogen interactions. Seminars in Cell & Developmental Biology, v. 20, p. 1048-1054, 2009.

CHAMRAD, D. C.; KORTING, G.; STUHLER, K.; MEYER, H. E.; KLOSE, J.; BLUGGEL, M. Evaluation of algorithms for protein identification from sequence databases using mass spectrometry data. Proteomics, v. 4, p. 619- 628, 2004.

CHANDRAN, D; INADA, N.; HATHER, G.; KLEINDT, C. K.; WILDERMUTH, M. C. Laser microdissection of Arabidopsis cells at the powdery mildew infection site reveals site- specific processes and regulators. Proceedings of the National Academy of Sciences, v. 107, p. 460-465, 2010.

CHANG, I. F.; CURRAN, A.; WOOLSEY, R.; QUILICI, D.; CUSHMAN, J. C.; MITTLER, R.; HARMON, A.; HARPER, J. F. Proteomic profiling of tandem affinity purified 14-3-3 protein complexes in Arabidopsis thaliana. Proteomics, v. 9, p. 2967-2985, 2009.

CHARRON, J.-B. F.; OUELLET, F.; PELLETIER, M.; DANYLUK, J.; CHAUVE, C.; SARHAN, F. Identification, expression, and evolutionary analyses of plant lipocalins. Plant Physiology, v. 139, p. 2017-2028, 2005.

CHARRON, J.-B. F.; OUELLET, F.; HOUDE, M.; SARHAN, F. The plant Apolipoprotein D ortholog protects Arabidopsis against oxidative stress. BMC Plant Biology, v. 8, p. 1-12, 2008.

CHEN, F.; LI, Q.; SUN, L.; HE, Z. The rice 14-3-3 gene family and its involvement in responses to biotic and abiotic stress. DNA Research, v.13, p. 53-63, 2006.

CHEN, S.; HARMON, A. L. Advances in plant proteomics. Proteomics, v. 6, p. 5504-5516, 2006.

CHEN, Z. R., ZHOU, T.; WU, X.; HONG, Y.; FAN, Z.; LI, H. Influence of cytoplasmic heat shock protein 70 on viral infection of Nicotiana benthamiana. Molecular Plant Pathology, v. 9, p. 809-817, 2008.

CHENG, Z.; MCCONKEY, B. J.; GLICK, B. R. Proteomic studies of plant-bacterial interactions. Soil Biology & Biochemistry, v. 42, p. 1673-1684, 2010.

CHI, W.-T.; FUNG, R. W. M.; LIU, H.-C.; HSU, C.-C.; CHARNG, Y.-Y. Temperature- induced lipocalin is required for basal and acquired thermotolerance in Arabidopsis. Plant Cell and Environment, v. 32, p. 917-927, 2009.

CHRISTIS, C.; LUBSEN, N. H.; BRAAKMAN, I. Protein folding includes oligomerization- examples from the endoplasmic reticulum and cytosol. FEBS Journal, v.275, p. 4700-4727, 2008.

CHUANG, S.M.; CHEN, L.; LAMBERTSON, D.; ANAND, M.; KINZY, T. G.; MADURA, K. Proteasome-mediated degradation of cotranslationally damaged proteins involves

translation elongation factor 1A. Molecular and Cell Biology, v. 25, p. 403-413, 2005. CLARK, G.; KONOPKA-POSTUPOLSKA, D.; HENNIG, J.; ROUX, S. Is annexin 1 a multifunctional protein during stress responses? Plant Signaling & Behavior, v. 5, p. 303-307, 2010.

COLLINS, R. M.; AFZAL, M.; WARD, D. A.; PRESCOTT, M. C.; SAIT, S. M.; REES, H. H.; TOMSETT, A. B. Differential proteomic analysis of Arabidopsis thaliana genotypes exhibiting resistance or susceptibility to the insect herbivore, Plutella xylostella. Plos one, v. 5, p.1-14, 2010.

CRISÓSTOMO, L. A.; SANTOS, F. J. S.; OLIVEIRA, V. H.; RAIJ, V. B.; BERNARDI, A. C. C.; SILVA, C. A.; SOARES, I. Cultivo do cajueiro anão precoce: aspectos fitotécnicos com ênfase na adubação e na irrigação. Fortaleza: Embrapa Agroindústria Tropical (Comunicado Técnico, 10), 2001, 10p.

CRISÓSTOMO, J. R.; CAVALCANTI, J. J. V.; BARROS, L. M., ALVES, R. E.; FREITAS, J. G.; OLIVEIRA, J. N. Melhoramento do cajueiro-anão-precoce: avaliação da qualidade do pedúnculo e a heterose dos seus híbridos. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 24, p. 477- 480, 2002.

CUNHA, R.B., CASTRO, M.S., FONTES, W. Espectrometria de massa de proteínas. Biotecnologia, Ciência e Desenvolvimento, ano IX, n. 36, 2006.

CURTIS, R. H. C. Plant parasitic nematode proteins and the host-parasite interaction. Briefings in Functional Genomics and Proteomics, v. 6, p. 50 -58, 2007.

CYSNE, A. Q.; CARDOSO, J. E.; MAIA, A. H. N.; FARIAS, F. C. Spatial-temporal analysis of gummosis in three cashew clones at Northeastern Brazil. Journal of Phytopathology, v.158, p. 676-682, 2010.

DANGL, J.L.; JONES, J.D. Plant pathogens and integrated defence responses to infection. Nature, v. 411, p. 826–833, 2001.

DASSO, M. The Ran GTPase: theme and variations. Current Biology, v. 12, p. R502-508, 2002.

DAVIDSON, R. M.; MANOSALVA, P. M.; SNELLING, J.; BRUCE, M.; LEUNG, H.; LEACH, J. E. Rice germin-like proteins: allelic diversity and relationships to early stress responses. Rice, v. 3, p. 43-55, 2010.

DAVIES, D. D.; GREGO, S.; KENWORTHY, P. The control of the production of lactate and ethanol by higher plants. Planta, v. 118, p. 297-310, 1974.

DELAURÉ, S. L.; HEMELRIJCK, W. V.; DE BOLLE, M. F. C.; CAMMUE, B. P. A.; DE CONINCK, B. M. A. Building up plant defenses by breaking down proteins. Plant Science, v. 174, p. 375-385, 2008.

DEMPSEY, D. A.; KLESSIG, D. F. SOS – too many signals for systemic acquired resistance? Trends in Plant Science, v. 17(9), p. 538-545, 2012.

DENISON, F. C.; PAUL, A.-L.; ZUPANSKA, A. K.; FERL, R. J. 14-3-3 proteins in plant physiology. Seminars in Cell & Developmental Biology, v. 22, p. 720-727, 2011.

DEVOTO, A.; MUSKETT, P. R.; SHIRASU, K. Role of ubiquitination in the regulation of plant defence against pathogens. Current Opinion in Plant Biology, v. 6, p. 307-311, 2003. DIAS, C.V.; MENDES, J. S.; DOS SANTOS, A. C.; PIROVANI, C. P.; SILVA, A.; GESTEIRA, F. MICHELI, GRAMACHO, K. P.; HAMMERSTONE, J.; MAZZAFERAF, P.; CASCARDO, J. C. M. Hydrogen peroxide formation in cacao tissues infected by the

hemibiotrophic fungus Moniliophthora perniciosa. Plant Physiology and Biochemistry, v. 49, p. 917-922, 2009.

DÓCZI, R.; BRADER, G.; PETTKÓ-SZANDTNER, A.; RAJH, I.; DJAMEI, A.;

kinase MKK3 is upstream of group C mitogen-activated protein kinases and participates in pathogen signaling. Plant Cell, v.19, p. 3266–3279, 2007.

DUDLER, R. Manipulation of host proteasomes as a virulence mechanism of plant pathogens. Annual Review of Phytopathology, v. 51, p. 521-542, 2013.

DUNWELL, J.; GIBBINGS, J.; MAHMOOD, T.; NAQVI, S. S. Germin and germin-like proteins: evolution, structure, and function. Critical Reviews in Plant Sciences, v. 27, p. 342- 375, 2008.

EFEOĞLU, B. Heat Shock Proteins and Heat Shock Response in Plants. Journal of Science, v. 22, p. 67-75, 2009.

ELIAS, J. E.; HAAS, W.; FAHERTY, B. K.; GYGI, S. P. Comparative evaluation of mass spectrometry platforms used in large-scale proteomics investigations. Nature Methods, v. 2, p. 667-675, 2005.

ELLIS, J.G.; DODDS, P.N.; LAWRENCE, G.J. Flax rust resistance gene specificity is based on direct resistance-avirulence protein interactions. Annual Review of Phytopathology, v. 45, p. 289–306, 2007.

ELLIS, J. G.; RAFIQI, M.; GAN, P.; CHAKRABARTI, A.; DODDS, P. N. Recent progress in discovery and functional analysis of effector proteins of fungal and oomycete plant

pathogens. Current Opinion in Plant Biology, v. 12, p. 399-405, 2009.

EL OIRDI, M.; EL RAHMAN, T. A.; RIGANO, L.; EL HADRAMI, A.;

RODRIGUEZ, M. C.; DAAYF, F.; VOJNOV, A.; BOUARAB, K. Botrytis cinerea manipulates the antagonistic effects between immune pathways to promote disease development in tomato. Plant Cell, v. 23, p. 2405-2421, 2011.

EL-SHORA , H. M. Properties of phenylalanine ammonia-lyase from Marrow cotyledons. Plant Science, v. 162, p. 1-7, 2002.

ELVIRA, M. I.; GALDEANO, M. M.; GILARDI, P.; GARCIA-LUQUE, I.; SERRA, M.T. Proteomic analysis of pathogenesis-related proteins (PRs) induced by compatible and incompatible interaction of pepper mild mottle virus (PMMoV) in Capsicum chinense L plants. Journal of Experimental Botany, v. 59, p. 1253-1265, 2008.

ENCINAS, O., 1996. Development and Significance of Attack by Lasiodiplodia theobromae (Pat.)Griff.&Maubl. In Caribbean Pine Wood and Some Other Wood Species.Uppsala, Sweden: Swedish University of Agricultural Sciences, PhD Tese.

FAN, J.;HILL, L.; CROOKS, C.; DOERNER, P.; LAMB, C.Abscisic acid has a key role in modulating diverse plant-pathogen interactions. Plant Physiology, v. 150, p. 1750-1761, 2009.

FAN, J.; CHEN, C.; YU, Q.; BRLANSKY, R. H.; LI, Z.-G.; GMITTER JR, F. G. Comparative iTRAQ proteome and transcriptome analyses of sweet orange infected by „„Candidatus Liberibacter asiaticus‟‟. Physiologia Plantarum, v. 143, p. 235-245, 2011.

FANATA, W. I. D.; LEE, S. Y.; LEE, K. O. The unfolded protein response in plants: a fundamental adaptive cellular response to internal and external stresses. Journal of Proteomics, v. 93, p. 356-368, 2013.

FANG, X.; Chen, W.; XINA, Y.; ZHANG, H.; YAN, C.; YU, H.; LIU, H.; XIAO, W.; WANGA, S.; ZHENG, A.;, LIU, H.; JIN, L.; MA, H.; RUAN, S. Proteomic analysis of strawberry leaves infected with Colletotrichum fragariae. Journal of Proteomics, v. 75, p. 4074-4090, 2012.

FAO (Food and Agriculture Organization of the United Nations). FAOSTAT, 2008. Disponível em: http://faostat.fao.org/. Acesso em 24/10/2008.

FAUROBERT, M.; PELPOIR, E.; CHAÏB, J. Phenol extraction of proteins for proteomic studies of recalcitrant plant tissues. In: THIELLEMENT, H.; ZIVY, M.; DAMERVAL, C.; MÉCHIN, V. In: Plant Proteomics: methods and protocols. Totowa : Humana Press, 2007, 416p.

FELIX, G.; BOLLER, T. Molecular sensing of bacteria in plants. The highly conserved RNA- binding motif RNP-1 of bacterial cold shock proteins is recognized as an elicitor signal in tobacco. Journal of Biological Chemistry, v. 278, p. 6201-6208, 2003.

FELLE, H. H.; HERRMANN, A.; HÜCKELHOVEN, R.; KOGEL, K.-H. Root-to-shoot signalling: apoplastic alkalinization, a general stress response and defence factor in barley (Hordeum vulgare). Protoplasma, v. 227, p. 17-24, 2005.

FERNANDES, J. B.; HOLANDA, J. S. de.; CHAGAS, M. C. M. das.; LIMA, J. M. P.; OLIVEIRA, J. S. F.; Recomendações Técnicas para o Cultivo do Cajueiro. Natal: EMPARN, 2009. 21p.

FERNÁNDEZ, R. G.; JESÚS, E. P.; JORRÍN-NOVO, V. Proteomics of Plant Pathogenic Fungi. Journal of Biomedicine and Biotechnology, v. 2010, p. 1-36, 2010.

FERNIE, A. R.; CARRARI, F.; SWEETLOVE, L. J. Respiratory metabolism: Glycolysis, the TCA cycle and mitochondrial electron transport. Current Opinion in Plant Biology, v. 7, p. 254-261, 2004.

FINKA, A.; CUENDET, A. F.; MAATHUIS, F. J.; SAIDI, Y.; GOLOUBINOFF, P. Plasma membrane cyclic nucleotide gated calcium channels control land plant thermal sensing and acquired thermotolerance.The Plant Cell, v. 24, p. 3333-3348, 2012.

FLOR, H. H. Host-parasite interaction in flax rust: its genetic and other implications. Phytopathology, v. 45, p. 680-685, 1955.

FRAIRE-VELÁZQUEZ, S.; RODRÍGUEZ-GUERRA, R.; SÁNCHEZ-CALDERÓN, L. 2011. Abiotic and Biotic Stress Response Crosstalk in Plants, Abiotic Stress Response in Plants - Physiological, Biochemical and Genetic Perspectives, Prof. Arun Shanker (Ed.), ISBN: 978-953-307-672-0. In Tech, Disponível em:

http://www.intechopen.com/books/abiotic-stress-response-in-plants-physiological-

FREEMAN, B.C.; BEATTIE, G.A. 2008. An Overview of Plant Defenses against Pathogens and Herbivores. The Plant Health Instructor. DOI: 10.1094/PHI-I-2008-0226-01.

FREIRE, F. C. O. A resinose do cajueiro. Caju Informativo, Fortaleza: 4 (1-2), 1991. FREIRE, F. C. O.; CARDOSO, J. E. Doenças das Spondias-cajarana (S. cytherera Sonn.), cajazeira (S. mombin L.), ciriguela (S. purpurea L.), umbu (S. tuberosa A. Camp.) e umbuguela (Spondia sp.) no Brasil. Agrotrópica, v. 9, p.75-82, 1997.