Bu çalışmada farklı bölgelerde yetişmiş semizotu (Portulaca oleracea L.) bitkisinin antioksidan özellikleri araştırıldı. Araştırma için Batman, Diyarbakır, Elazığ ve Mardin’den yabani semizotu örnekleri ile Elazığ’da kültür ortamında yetiştirilmiş semizotu tedarik edilerek, bu bitkilerin toprak üstü kısımları kullanıldı. Bitkiler oda şartlarında kurutulduktan sonra, aseton, etanol ve su içerisindeki ekstraktları alındı. Bu ekstraktlardan çözücüler uçurulduktan sonra farklı konsantrasyonda örnekler hazırlanarak, Toplam Fenolik Madde (TPC), DPPH Giderme Aktivitesi, Metal Şelatlama Kapasitesi ve H2O2
Giderme Aktiviteleri tayin edildi. Elde edilen bulgular kendi aralarında ve standart maddelerle karşılaştırıldı.
Bitkilerin içerdiği fenolik bileşikler, primer antioksidan ve serbest radikal sonlandırıcı olarak davranmak gibi önemli özelliklere sahiptir. Bu bileşikler bitkilerin önemli doğal bileşenleri olarak karşımıza çıkmaktadır. Bu çalışmada bitkilerin ekstraktlarındaki toplam fenolik madde miktarı FCR yöntemi ile tayin edildi. Sonuçlar önemli standart maddeler olarak kabul gören gallik asit ve kateşol eşdeğeri türünden hesaplandı.
Elde edilen sonuçlara bakılacak olursa; su ekstraktları için 1,218-6,476 GAE mg/g arasında, etanol ekstraktları için 0,742-5,047 GAE mg/g arasında ve aseton ekstraktları için ise, 1,704-8,381 GAE mg/g arasında çıkmıştır (Tablo 3.1.). Kateşol eşdeğeri olarak incelendiğinde ise; su ekstraktları için 5,238±1,65-10,476±0,825 KE mg/g arasında, etanol ekstraktları için 4,762±0,825-9,047±0,825 KE mg/g arasında ve aseton ekstraktları için 5,714±1,429-12,381±0,825 KE mg/g arasında sonuçlar elde edilmiştir (Tablo 3.2.).
Bu sonuçlar arasında, aseton ekstraktıyla elde edilen ölçümler (ort. 5,81 mg/g) diğerlerine ( ort. 4,48 mg/g ) göre daha yüksek çıkarken (p<0.05), şehir olarak ta en fazla toplam fenolik madde içeriğinin Diyarbakır örneğinde (asetonda - 12,38±0,83 mg KE/g) en azının ise Elazığ’dan alınmış olan kültür ortamında yetiştirilmiş örnekte (etanolde - 0,74±0,84 mg GAE/g)olduğu görülmüştür (p<0.005).
İlgili literatür taramalarında, Uyar ve diğ. (2013) su ile yaptıkları çalışmada 1,319 mg/g GAE ekstrakt değeri bulmuşlardır. Andalwulan ve diğ. (2010) tarafından Endonezya’dan temin edilmiş örnekte etanol ile yaptığı çalışmada 0,334 mg/g GAE ekstrakt değeri tespit edilmiştir. Sulaıman ve diğ.(2011)’nin çalışmasında asetonda 138,2
52
mg/g GAE ekstrakt, etanolde 23,8 mg/g GAE ekstrakt ve suda 98,6 mg/g GAE ekstrakt değerleri elde edilmiştir. Alam ve diğ. (2015) oniki farklı semizotu üzerinde yaptıkları çalışmalarda 0,96 ile 9,12 arasında mg/g GAE sonuçları elde etmişlerdir. Rinaldi ve diğ. (2010) çalışmalarında 4,7 mg/g GAE sonucunu bulmuşlardır.
Doğal antioksidanlar içinde oldukça önemli olan bitkisel polifenol madde tarımsal süreç, güneş, hava şartları ve iklim, hasat zamanı ve depolama şartları v.b bir çok dış faktörden etkilenir (Heimler ve diğ., 2007). Ayrıca çözücü ve ekstraksiyon süreçlerindeki farklılık da fenolik bileşiklerde tespit edilen değerler arasındaki değişikliklerinden sorumludur.
Çalışmamızda kullanılan bitki ekstratlarında DPPH üzerinden serbest radikal giderici etkileri tayin edilmiştir. DPPH, antioksidanların serbest radikal giderici aktivitesi tayini için kullanılan önemli bir sentetik radikaldir. Bu tayinde, mor renkli DPPH çözeltisi serbest radikal bulunduran maddelerle etkileşimi sonucu, çözeltinin rengi sarıya dönüşür. Testler sonucu elde edilen sonuçlar iyi birer kontrol maddesi olan Troloks, BHT ve BHA ile karşılaştırılmış ve farklı şehirlerde yetişmiş semizotu örneklerinin serbest radikal giderme aktivitesi % inhibisyon cinsinden hesaplanmıştır.
Örneklerin DPPH giderme aktiviteleri; su ekstraktı için % 1,64 ile 58,05 arasında, etanol ekstraktı için % 2,65 ile 53,01 arasında ve aseton ekstraktı için % 3,28 ile 56,24 arasında bulunmuştur (Tablo 3.3.). Deneylerde genel olarak su (ort. % 33,13) ve aseton ekstraktlarının (ort. % 29,71) birbirine yakın (p>0.05) ve etanolden ( ort. % 22,48) daha yüksek sonuçlar verdiği görülmüştür (p<0.005). Aynı zamanda, Elazığ, Diyarbakır, Batman örneklerinin DPPH giderme aktivitelerinin Mardin ve Kültür ortamı örneklerine göre daha yüksek olduğu görülmüştür (p<0.005).
Alam ve diğ. (2015) 12 farklı semizotu üzerinde 0,156-10 mg/mL konsantrasyon aralığında yaptıkları çalışmalarda % inhibisyon değerlerini 41,25 ile 66,81 arasında bulmuşlar ayrıca en düşük IC50 değerlerini 2,52 mg/mL, enyüksek IC50 değerlerini ise 3,29 mg/mL değerlerinde bulduklarını belirtmiştir. Mousavi ve diğ. (2015) ise yaptıkları çalışmada % inhibisyon değerlerini 15,41 ile 79,06 arasında bulduklarını bildirmiştir. Khaled ve Sayed Mokhtar (2014) semizotu yapraklarında yaptıkları araştırmalarında en fazla % 52,23 değerini elde etmişlerdir.
Ekstraktlarının Fe+2
iyonlarını şelatlama aktivitesi, 0,2-1,0 mg/mL derişim aralığında yapılan ölçümlerde Fe+2
iyonları şelatlama yeteneği % 0,37 ile % 87,61 arasında bulunmuşken, konsantrasyon arttıkça genelde bir artış olduğu görüldü (Tablo 3.4.). Genel
53
itibariyle artan konsantrasyona karşı, % inhibisyon artarken, bu artışların bazen çok düşük seviyede olduğu gözlendi. Genel itibariyle Elazığ ve Diyarbakır’dan alınmış örnekler daha iyi Fe+2 şelatlama özelliği gösterdiği tespit edilmiştir. En iyi değerler, Elazığ’ dan elde edilen örneğin etanoldeki ekstraktı (1,0 mg/mL derişimde - % 59,86 ±0,03) ile Diyarbakır’ dan elde temin edilen örneğin sulu ekstraktında (1,0 mg/mL derişimde - % 87,61 ±0,03) en düşük değer ise Mardin’ e ait örneğin etanol ekstraktında (0,2 mg/mL derişimde - % 0,37
±0,12)elde edilmiştir (p<0.05).
Peksel ve diğ.’nin (2006) yaptığı çalışmada 0,25-1,00 mg/mL konsantrasyonda ekstraktların farklı inkübasyon sürelerinde verdikleri şelatlama aktivitesi 562 nm’de ölçülmüştür. Bu ölçümlerdeki değerler yaklaşık % 10 ile % 50 arasında bulunmuştur.
Bu çalışmamızda bitki ekstratlarının H2O2 giderme aktivitelerine de bakıldı. Daha
önceden yapılmış fazla çalışma olmadığından ve var olan benzer çalışmalarda genellikle 0,25 ve 0,4 mg/mL aralığında, iyi sonuçlar alındığından bizim çalışmamızda da bu konsantrasyon değerleri arasındaki çözeltiler üzerinden deneyler yapıldı ve H2O2 giderme
aktivitelerine % 2,03 ile % 35,78 arasında bulunmuştur. Bu sonuçlardan, ekstratların düşük H2O2 giderme aktivitesine sahip olduğu tespit edilmiştir (Tablo 3.5.). Peksel ve
diğ.’nin (2006) yaptığı çalışmada 20-100 µg/mL derişimlerde çözeltiler kullanılmış ve su ekstraktında 0,1 mg/mL derişimli çözeltinin H2O2 giderme aktivitesi % 15 olarak
belirtilmiştir olup, bizim elde ettiğimiz değerler arasında bulunduğu görülmektedir.
Çalışmamızın sonuçları itibariyle fenolik madde miktarının en fazla bulunduğu örneğin alındığı şehir Diyarbakır (asetonda - 12,38±0,83 mg KE/g), DPPH giderme aktivitesinin en yüksek olduğu örneklerin alındığı şehirler Elazığ (etanolde - % 53,01 ±0,26), Diyarbakır (suda - % 58,05 ±1,35) ve Batman (asetonda - % 52,46 ±0,58) , demir şelatlama kapasitesinin en yüksek olduğu örneğin alındığı şehirler ise Elazığ (etanolde - % 59,86
±0,03) ve Diyarbakır (suda - % 87,61 ±0,03) olarak tespit edilmiştir. Yapılan deneyler
açısından antioksidan kapasitesinin en az bulunduğu örnekler ise kültür ortamında yetiştirilmiş semizotu ve diğerlerine nispeten Mardin ilinden alınmış semizotu olarak görülmektedir (p<0.05). Çözücü olarak kullanılmış olan su, etanol ve asetonun ise farklı deneylerde değişken sıralamalarla öne çıktıkları dolayısıyla da aralarında net bir kıyaslama yapılamayacağı görülmüştür (p>0.05).
54
KAYNAKLAR
Abas, F., Lajis, N.H., Israf, D.A., Khozirah, S. ve Kalsom, Y.U., 2006. Antioxidant and
nitric oxide inhibition activities of selected Malay traditional vegetables, Food Chemistry, 95, 566-573.
Abdollahi, M., Ranjbar, A., Shadnia, S., Nikfar, S. ve Rezaie, A., 2004. Pesticides and
oxidative stress, a review, Med. Sci. Monit., 10, 141-147.
Adam, B., Kıyıcı, A. ve Ardıçoğlu, Y., 2013.Temel ve klinik biyokimya, s:210-211. Adam, B., Kıyıcı, A. ve Ardıçoğlu, Y., 2013.Temel ve klinik biyokimya, s:216-217. Akkuş, İ., 1995. Serbest Radikaller ve Fizyopatolojik Etkileri, Mimoza Yayınları, Konya. Akpoyraz, M. ve Durak, İ., 1995. Ankara Tıp Mecmuası, sayı:48, s:253-262.
Alam, Md., Amirul, A.S., Juraimi, M.Y., Rafii, A.A., Hamid , F., Aslani ve Alam M.Z., 2015. Effects of salinity and salinity-induced augmented bioactive
compounds in purslane (Portulaca oleracea L.) for possible economical use, Food Chemistry, 169, 439–447.
Albayrak S., Sağdıç O. ve Aksoy A., 2010. Bitkisel ürünlerin ve gıdaların antioksidan
kapasitelerinin belirlenmesinde kullanılan yöntemler, Erciyes Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, 26, 4, 401-409.
Alçiçek, A. ve Başlar, S., 1995. Bitki ve sularda aşırı nitrat birikiminin sonuçları, Ekoloji
Çevre Dergisi, 14, 17.
Ali S.S., Kasoju N., Luthra A., Singh A., Sharanabasava H., Sahu A. ve Bora U.,
2008. Indian Medicinal herbs as sources of antioxidants, Science Direct, Food Research, 41,1-15.
Altınışık, M., 2000. Serbest Oksijen Radikalleri ve Antioksidanlar, ADÜ Tıp Fakültesi,
Sunum, 46.
Andarwulan, N., Ratna, B., Sandrasari, DA., Bolling, B. ve Wijaya, H., 2010.
Flavonoid content and antioxidant activity of vegetables from Indonesia, Food Chemistry, 121, 1231–1235.
Apak, R., Güçlü, K., Özyürek, M. ve Karademir, S.E, 2004. Novel total antioxidant
capacity index for dietary polyphenols and vitamins C and E, using their cupric ion reducing capability in the presence of neocuproine, CUPRAC Method, Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52, 26, 7970-7981.
55
Apak, R., Güçlü, K., Demirata, B., Özyürek, M., Çelik, E.S., Bektaşoğlu, B., Berker, I.K. ve Özyurt, D., 2007. Comparative Evaluation of Various Total Antioxidant
Capacity Assays Applied to Phenolic Compounds with the CUPRAC Assay, Molecules, 12, 1496-1547.
Ardağ, A., 2008. Antioksidan Kapasite Tayin Yöntemlerinin Analitik Açıdan
Karşılaştırılması, Yüksek Lisans Tezi, Dan: Karagözler, A. E., Adnan Menderes Üniversitesi Fen Bilimler Enstitüsü Analitik Anabilim Dalı.
Arendt, J. ve Skene, DJ., 2005. Melatonin as a chronobiotic, Sleep Med. Rev., 9, 25-39. Aydın, A., Sayal, A. ve Işımer, A., 2001. Serbest Radikaller ve Antioksidan Savunma
Sistemi, Gülhane Askeri Tıp Akademisi Ayın Kitabı.
BaoGuang, L., YuHua, L. ve YueDong, S., 2000. The studies on germination of Purslane
seeds, Department of Horticulture, Shandong Agricultural University, Taian 271018, China, China-Vegetables, 6, 9-11 (Abstract).
Barnes, P.J., 1990. Reactive Oxygen Species and Airway Inflammation, Free Radic. Biol.
Med., 9, 235-243.
Bast, A., Haenen, G.R.M.M. ve Doelman, C.J.A., 1991. Oxidants and Antioxidants,
State of the Art. Am. J. Med., 91, Suppl., 3C, 2-13.
Baysal, T. ve Ersus, S., 1999. Karotenoidler ve insan sağlığı, Gıda, 24-3, 177-185.
Becker, EM., Nissen LS. ve Skibsted, LH., 2004. Antioxidant evaluation protocols: Food
quality or health effects, European Food Research and Techonology, 219: 561.
Benzie, IFF. ve Strain, JJ., 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a
measure of “antioxidant power”: The FRAP assay. Analytical Biochemistry 239, 70–76.
Blois, MS., 1958. Antioxidant determinations by the use of stable free radical, Nature,
1199-1200.
Brand-Williams, W., Cavalier, M. E. ve Berset, C., 1995. Use of free radical method to
evaluate antioxidant activity, Food Science and Technology, 28(1), 25-30.
Byrne, R. ve McAndrews, J. H., 1975. Pre-Columbian purslane (Portulaca oleracea L) in
the New World Nature , Letters to natüre, 253, 726-727.
Burton, G.W., 1994. Vitamin E: Molecular and Biological Function Proceedings of the
Nutrition Society, 53(2), 251–262.
Türkay, C., Yönem, Ö., Arıkan, O. ve Baskın, E., 2004. Nitric oxide and renal functions
in liver cirrhosis Karaciğer sirozunda nitrik oksit ve renal fonksiyonlar, Turk J Gastroenterol, 15(2), 73-76.
56
Chan, K., Islam M.W., Kamil M., Radhakrishnan, R., Zakaria, M.N.M.ve Habibullah, M., Attas, A., 2000. The analgesic and anti-inflammatory effects
of Portulaca oleracea L. subsp. Sativa (Haw.), Celak Journal of Ethnopharmacology, 73, 445–451.
Cheeseman, K.H. ve Slater, T.F., 1993. An Introduction to Free Radical Biochemistry,
Br. Med. Bull., Jul, 49(3), 481-93.
Chen, J., Shi, Y. ve Liu, J., 2003. Determination of noradrenaline and dopamine in
Chinese herbal extracts from Portulaca oleracea L. By high-performance liquid chromatography, Journal of Chromatography A, 1003, 127-132.
Cheung, C.C.C., Zheng, G.J., Li, A.M.Y., Richardson, B.J. ve Lam, P.K.S., 2001.
Relationship Between Tissue Concentrations of Polycylic Aromatic Hydrocarbons and Antioxidative Responses of Marine Mussels, Perna viridis, Aquatic Toxicol., 52, 189-203.
Cotton, F.A. ve Wilkonson, G., 1988. Advanced Inorganic Chemistry, 5th Ed., John
Wiley &Sons Inc., USA.
Cross, CE., Halliwell, B., Borish, ET., Pryor, WA., Ames, BN., Saul, RL., McCord, JM. ve Harman, D., 1987. Oxygene radicals and human disease, Ann. Intern.
Med., 107, 526-545.
Çavdar, C., Sifil, A. ve Çamsarı, T., 1997. Reaktif Oksijen Partikülleri Ve Antioksidan
Savunma, Türk Nefroloji Diyaliz ve Transplantasyon Dergisi/Office Journal of the Turkish Nephrology, Association, 3-4, 92-95.
D'Amelio, F., 1999. Botanicals, A Phytocosmetic Desk Reference, Boca Raton, FL: CRC
Press, 245-246.
Dasgupta, N. ve De, B., 2007. Antioxidant activity of some leafy vegetables of India: A
comparative study, Food Chemistry, 101, 471-474.
Davis, P. H., 1967. Flora of Turkey and the East Aegean Islands, Edinburgh at the
University press, Printed in Great Britain by Robert Cunningham and Sons Limited, Alva, 13-14.
Deaton, C.M. ve Marlin, D.J., 2003. Exercise-Associated Oxidative Stress, Clin. Tech.
Equine Pract, Vol 2, No 3, 278-291.
Demirsoy, A., Türkan, İ. ve Gündüz, G., 2003. Genel Biyoloji, 5. baskı: 382-383.
Dillard, C.J. ve German, J.B., 2000. Phytochemicals: Nutraceuticals and Human Health,
57
Dinis, TCP., Maderia, VMC. ve Almeida, LM., 1994. Action of phenolic derivatives
(acetaminophen, salicylate, and 5-aminosalicylate) assay inhibitors of membrane lipid peroxidation and assay peroxyl radical scavengers, Archives of Biochemistry and Biophysics, 315(1), 161-169.
Dweck, A.C., 2001. Purslane (Portulaca oleracea L.) the global panacea, Dweck Data
Personel Care Magazine, 2/ 4, 7-15.
Ellis, D.R., Guillard, K. ve Adams, R.G., 2000. Purslane as a living mulch in broccoli
production, American Journal of Alternative Agriculture, 15(2), 50-59.
Erenel, G., Erbaş, D. ve Arıcıoğlu, A., 1992. Serbest Radikaller ve Antioksidan
Sistemler, Gazi Tıp Derg., 3, 243-250.
Fantel, A.G., 1996. Reactive Oxygen Species in Developmental Toxicity: Review and
Hypothesis, Teratology, 53, 96–217.
FAO, 1994.Neglected Crops 1492 from a Different Perspective (Edited by J.E. Hernández
Bermejo and J. León). FAO Plant Production and Protection Series, no.26, ISBN 92-5-103217-3, 10.
Franke, SIR., Ckless, K., Silveira, JD., Rubensam, G., Brendel, M., Erdtmann, B. ve Henriques, JAP., 2004. Study of antioxidant and mutagenic activity of different
orange juices, Food Chemistry, 88(1), 45-55.
Frankel, EN. ve Meyer, AS., 2000. The problems of using one-dimensional methods to
evaluate multifunctional food and biological antioxidants, Journal of the Science of Food and Agriculture, 80, 1925-1941.
Fridovich, I., 1975. Superoxide Dismutase, Ann. Rev. Biochem., 44, 147-159.
Fridovich, I., 1997. Superoxide Anion Radical, Superoxide Dismutases and Related
Matters. J. Biol. Chem., 272(30), 18515-18525.
Gardes-Albert, M., Zarev, S., Bonnefont-Rousselot, D., Cosson, C., Beaudeux, J.L., Delattre, J., Legrand, A., ve Therond, P., 2002. In vitro low-density
lipoprotein oxidation by copper or .OH/O2. : new features on carbonilation and
fragmentation of apolipoprotein B during the lag phase, Biochem. Biophys,
404(1), 10-7.
Gardes-Albert, M., Bonnefont-Rousselot, D., Cheve, G., Gozzo, A., Tailleux, A., Guilloz, V., Caisey, S., Teissier, E., Fruchart, J-C., Delattre, J., Jore, D., Lesieur, D. ve Duriez, P., 2002. Melatonin related compounds inhibit lipid
58
peroxidation during copper or free radical-induced LDL oxidation, Journal of pineal research, 33(2), 109-17.
Gonzales, J., 2004. Portulaca Plant named ‘Yubi Primrose’, United States Patent
Application, 20040168243, Kind Code P1, Serial No: 374910.
Grieve, C.M. ve Suarez, D.L., 1997. Purslane (Portulaca oleracea L.): A halophtic crop
for drainage water reuse systems, Netherlands, 192, 277-283.
Gülçin İ., Oktay M., Kireçci E. ve Küfrevioğlu Öİ., 2003. Screening of antioxidant and
antimicrobial activities of anise (Pimpinella anisum L.) seed extracts, Food Chemistry, 83, 371-382.
Günay, A., 2005. Sebze Yetiştiriciliği, Cilt 2, İzmir, s. 155-157.
Halliwell, B. ve Gutteridge, J.M.C., 1984. Oxygen Toxicity, Oxygen Radicals, Transition
Metals and Disease, Biochem J., 219, 1-14.
Halliwell, B. ve Gutteridge, J.M.C., 1990. Role of free radicals and catalytic metal ions
in human disease: An overview, In: Methods in Enzymology, 186, 1-85.
Halliwell B, Gutteridge JM ve Cross CE., 1992. Free radicals, antioxidants, and human
disease: where are we now?, J Lab Clin Med., 119(6), 598-620.
Halliwell B., 1994. Free radicals and antioxidants:A personal view, Nutrition Reviews, 52(8), 253-265.
Halliwell, B. ve Gutteridge, J.M.C., 1999. Free Radicals in Biology and Medicine, Third Edition, Oxford University Pres. Inc., New York, 936.
Halliwell, B., Clement, Mv. ve Long, Lh., 2000. Hydrogen peroxida in the human body,
FEBS Letter, 486, 10-13.
Halvorsen BL., Holte K., Myhrstad MCW., Barigmo I., Hvattum E. ve Remberg SF.,
2002. A systematic screening of total antioxidants in dietary plants, The Journal of Nutrition, 132(3), 461-471.
Heimler D., Isolani L., Vignolini P., Tombelli S. ve Romani A., 2007. Polyphenol
content and antioxidative activity in some species of freshly consumed salads, Journal of Agricultural and Food Chemistry, 55, 1724-1729.
Hermes-Lima, M., Storey, J.M., ve Storey, K.B., 2001. Antioxidant Defenses and
Animal Adaptation to Oxygen Availability During Environmental Stress, In: Storey K.B., Storey J.M. (Eds), Cell and Molecular Responses to Stress,. Elsevier Press, Amsterdam, pp. 263-287.
59
Hermes-Lima, M. ve Zenteno-Savin, T., 2002. Animal Response to Drastic Changes in Oxygen Availability and Physiological Oxidative Stress, Comp. Biochem. Physiol. Part C, 133, 537–556.
Huang D., Ou B. ve Prior R., 2005. The chemistry behind antioxidant capacity assays,
Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53, 1841-1856.
Ito N., Hirose M., Fukushima S., Tsuda H., Shirai T. ve Tatematsu M., 1986. Studies
on antioxidants: their carcinogenic and modifying effects on chemical carcinogenesis, Food and Chemical Toxicology, 24(10/11), 1071-1082.
İşbilir, Şebnem S., 2008. Yaprakları Salata-Baharat Olarak Tüketilen Bazı Bitkilerin
Antioksidan Aktivitelerinin İncelenmesi, Doktora Tezi, Dan: Sağıroğlu, A., Trakya Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, Kimya Anabilim Dalı, 15.
Jalali, M., Niazmand, R. ve Noghabi, M. S., 2015. Antioxidant Activity of Purslane
(Portulaca oleracea L.) Seed Hydro-alcoholic Extract on the Stability of Soybean Oil, J. Agr. Sci. Tech., 17, 1473-1480.
Kashaninejad, M. ve Tabill, L.G., 2004. Drying Characteristics of Purslane (Portulaca
oleraceae L.), Drying Technology, 22 (9), 2183–2200.
Kazanç M.B, 1997. Antioksidan Vitaminler, Sendrom, Temmuz, 14-22.
Khaled, M. Y. ve Sayed, M. M, 2014. Effect of Drying Methods on the Antioxidant
Capacity, Color and Phytochemicals of Portulaca oleracea L. Leaves, J Nutr Food Sci, Food Technology Department, Faculty of Agriculture, Suez Canal University, 41522, Ismailia, Egypt, 4, 6.
Koleva, I. I., Van Beek, A. T., Linssen, J. P. H., de Groot, A. ve Evstatieva L. N., 2002.
Screening of plant extracts for antioxidant activity: a comparative study on three testing methods, Phytochemical Analysis, 13, 8-17.
Korthuis RJ. ve Granger DN., 1993. Reactive oxygen metabolites, neutrophils, and the
pathogenesis of ischemic-tissue/reperfusion, Clin Cardiol, 16(4 Suppl 1), I19- 26.
Kramer K., 2001. Nutra ceutials in Heath and Disease Prevention., Marcel Dekker
Incorporated., New York, 8, 113.
Liu, L., Howe, P., Zhou, Y., Xu, Z., Hocart, C. ve Zhang, R., 2000. Fatty acids and â-
carotene in Australian purslane (Portulaca oleraceae L.) varieties, Journal of Chromatography A, 893, 207-213.
60
Lunec, J. ve Blake, D., 1990. Oxygen Free Radicals: Their Relevance to Disease Processes., In: Cohen R.D., Lewis B., Albert K.G.M.M., The Metabolic and Molecular Basis of Acquired Disease. Balliere Tindall, London, 189-212.
Lussignoli S., Fraccarolli M., Andriolli G., Brocco G. ve Bellavite P., 1999. A
microplate-based colorimetric assay of the total peroxyl radical trapping capability of human plasma, Analytic Biochemistry, 269, 38-44.
Lülüfer, T., Gürbüz, P., Eskandari, G., Ercan, B. ve Atik, U., 2000. Serbest Radikaller,
Mersin Üniversitesi tıp fakültesi dergisi, 1, 52-58.
Martin, K.R. ve J.C. Barret, 2002. Reaktive oksijen species as double-edged swords in
cellular processes:low-dose cell signaling versus high-dose toxicity, Hum.Exp.Toxicol, 21, 71-75.
Mata, AT., Proença, C., Ferreira, AR., Serralheiro, MLM., Nogueira, JMF. ve Araujo, MEM., 2007. Antioxidant and antiacetylcholinesterase activities of five
plants used as Portuguese food spices, Food Chemistry, 103, 778-786.
Mates, J.M., 2000. Effects of Antioxidant Enzymes in the Molecular Control of Reactive
Oxygen Species Toxicology, Toxicology, 153, 83-104.
Matsukizono, H., 2003. Portulaca Plant named ‘Kakegawa CY2’, United States Patent
Application, 20030145364, Kind Code P1, Serial No: 058858.
McCord, J.M. ve Fridovich, I., 1969, Superoxide Dismutase, An Enzymic Function for Erithrocuprein (Hemocuprein), J. Biol. Chem., 244, 6049-6055.
Mercan, U., 2004. Toksikolojide Serbest Radikallerin Önemi. Yüzüncü Yıl Üniversitesi
Vet. Fak. Derg., 15 (1-2), 91-96.
Miliauskas, G., Venskutonis, P. R. ve Van Beek, T. A., 2004. Screening of radical
scavenging activity of some medicinal and aromatic plant extracts, Food Chemistry, 85 (2), 231-237.
Miller, N.J., Rice, E.C., Davies, M.J., Gopinathan, V. ve Milner, A., 1993. A novel
method for measuring antioxidant capacity and its application to monitoring the antioxidant status in premature neonates, Cilinical Science, 84, 407-412.
Miller, N. ve Luiz-Larrea, M., 2002. Flavonoids and other plant phenols in the diet: Their
significance as antioxidants, Journal of Nutritional and Environmental Medicine,
12, 39-51.
Mogalhaes, L. M., Segundo, M. A., Reis, S., Lima, L. L. F. C. ve Rangel, O. S. S.,
61
capacity in food products, Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54 (15), 5241-5246.
Molyneux, P, 2004. The use of the stable free radical diphenylpicryl-hydrazyl (DPPH) for
estimating antioxidant activity, Journal of Science and Technology, 26(2), 211- 219.
Moncada, S., Palmer, R.M.J. ve Higgs, E.A., 1991. Nitric Oxide: Physiology,
Pathophysiology and Pharmacology, Pharmacol. Rev., 43, 109-142.
Murray, R.K., Mayes, P.A., Granner, D.K. ve Radwell, V.W., 1993. Harper’in Biyokimyası, Çevirenler: Mentes, G. ve Ersöz, B.,
Murray, RK., Granner, DK., Mayes, PA. ve Rodwell, VW., 1996. Harper’ın Biyokimyası 24. baskı, (Çev: Dikmen N., Özgünen T.), Barış Kitabevi, İstanbul. Nordberg, J. ve Arnér, E.S.J., 2001. Reactive Oxygen Species, Antioxidants, and the
Mammalian Thioredoxin System, Free Radical Biol. Med., 31, 1287– 1312.
Odhav, B., Beekrum, S., Akula, U. ve Baijnath, H., 2007. Preliminary assessment of
nutritional value of traditional leafy vegetables in KwaZulu Natal, South Africa, Journal of Food Composition and Analysis, 20, 430-435.
Okwuasaba, F., Ejike, C. ve Parry, O., 1986. Skeletal Muscle Relaxant Properties of the
Aqueous Extract of Portulaca oleracea, Journal of Ethnopharmacology, 17, 139- 160.
Omara-Alwala, T.R., Mebrahtu, T., Prior, D.E. ve Ezekwe, M.O., 1991. Omega-3 fatty
acids in Purslane (Portulaca oleraceae L.) tissues, J. Am. Oil Chem. Soc., 68(3), 198–199, (Abstract).
Özdem, SS. ve Sadan, G., 1994. Serbest oksijen radikallerinin oluşumu ve klinik açıdan
önemi, Akdeniz Ü. Tıp Fak. Derg., 11, 63-71.
Özkan, M. ve Yüksekol, İ., 2003. Nitrik Oksit ve Akciğerler, Türk Toraks Dergisi,
April, 4, 1, 088-094.
Özyürek, M., Güçlü, K. ve Apak, R., 2011. The main and modified CUPRAC methods
of antioxidant measurement, Trends in Analy. Chem., 30, 4, 652-664.
Packer L., Witt E. ve Tritschler, H.J., 1995. -Lipoic acid as a biological antioxidant,
Science Direct-Free Radical Biology & Medicine, 19(2), 227-250.
Palaniswamy, U.R., McAvoy, R.J. ve Bible, B.B., 2000. Omega-3 Fatty Acid
Concentration in Portulaca oleracea is Altered by Nitrojen Source in Hydroponic Solution, J. Amer. Soc. Hort. Sci., 125(2), 190-194.
62
Palaniswamy, U.R., McAvoy, J.R. ve Bible, B.B., 2001. Stage of Harvest and
Polyunsaturated Essential Fatty Acid Concentrations in Purslane (Portulaca oleraceae L.) Leaves, J. Agric. Food Chem, 49, 3490-3493.
Pan Y., Zhang X., Wang H., Liang Y., Zhu J., Li, H., Zhang Z. ve Wu, Q., 2007.
Antioxidant potential of ethanolic extract of Polygonum cuspidatum and application in peanut oil, Food Chemistry, 105(4), 1518-1524.
Parmar, MS., 2009. Uric acid and cardiovascular risk, N. Engl. J. Med., 360, 539.
Peksel, A., Arısan-Ataç, I. ve Yanardağ, R., 2006. Antioxidant Activities of Aqueous
Extracts of Purslane (Portulaca oleraceae L.), Ital. J. Food Sci., 18(3), 295-308.
Pellegrini, N., Miglio, C., ve Del Rio, D., 2009. Effect of domestic cooking methods on
the total antioxidant capacity of vegetables, Int. J. Food Sci. Nutr., 60 (Suppl 2), 12–22.
Pieri, C., Marra, M., Moroni, F., Recchioni, R. ve Marcheselli, F., 1994. Melatonin: a
peroxyl radical scavenger more effective than vitamin E, Life Sci., 55, 271-276.
Prior, R.L., Wu, X. ve Karen, S., 2005. Standardized Methods for the Determination of
Antioxidant Capacity and Phenolics in Food and Dietary Supplements, Journal of Agriculture Food Chemistry, 53, 4290-4302.
Quinlan, M.B., Quinlan, R.J. ve Nolan, J.M., 2002. Ethnophysiology and herbal
treatments of intestinal worms in Dominica. West Indies, Elsevier Science Ireland Ltd. All rights reserved, PII: SO378-8741 (02), 00002-8, 75-83.
Radhakrishnan, R., Zakaria, M.N.M., Islam, M.W., Chen, H.B., Kamil, M., Chan, K. ve Al-Attas, A., 2001. Neuropharmacological actions of Portulaca oleraceae L
v. Sativa (Hawk), Journal of Ethnopharmacology, 76, 171-176.
Rao, G.R., Konjilal, G. ve Mohan, K. R., 1978. extended application of Folin- Ciocalteu
reagent in the determination of drugs, The Analyst, 103, 993-994.
Ratnam, DV., Ankola, DD. ve Bhardwaj, V., 2006. Role of antioxidants in prophylaxis