Türkiye’de her yıl yüksek miktarda açığa çıkan tarımsal atıkların büyük çoğunluğunu buğday tarlası atıkları oluşturmaktadır. Ortaya çıkan atıkların mümkün olan en yüksek oranda geri kazanılması ve katma değeri daha yüksek ürünlere dönüştürülmesi amacıyla, petrol rafinerilerinin bir benzeri olan ve biyükütleden yakıt, enerji, kimyasallar ve biyomateryaller üretilen biyo-rafinerilerin geliştirilmesi ve yaygınlaştırılması ile ilgili çalışmalar hız kazanmıştır. Hemiselüloz ve selülozun etkili bir şekilde geri kazanılması, ligninin de etkili bir şekilde biyokütleden ayrılmasına bağımlıdır. Son yıllarda ligninin monomerlerine parçalanmasıyla fenolik maddelerin üretimi oldukça popüler bir konu olmuştur. Bu çalışmada, antioksidan aktiviteye sahip fenolik bileşikler olarak ülkemize ekonomik anlamda katkısı olmayan tarımsal atıkların değerlendirilebileceği ve özellikle buğday atıklarından ekonomik ve endüstriyel değeri olan başta ferulik ve p-kumarik asit olmak üzere yüksek oranda fenolik bileşiklerin üretilebileceği gösterilmiştir.
Lignoselülozik materyallerden fenolik bileşiklerin üretimi farklı yöntemlerle yapılabilmektedir. Bu çalışmada kimyasal yöntemle fenolik bileşikler üretilmiştir. Asit hidrolizi sonrası, alkali hidrolizasyonuna tabi tutulan buğday saplarının lignoselülozik yapısı hidrolizasyon esnasında fenolik bileşikler halinde çözünür hale geçirilmiştir. Çalışmada farklı NaOH konsantrasyonları, sıcaklık ve sürelerde hidrolizasyonlar gerçekleştirilmiş ve optimum koşullar olarak 2,3 M NaOH, 90 dakika, 120 ºC sıcaklık bulunmuştur. Bu koşularda 1 g buğday sapından 0,8 mg ferulik asit ve 2,4 mg kumarik asit elde edilmiş ve elde edilen hidrolizatın 1,1 mmol TE/l FRAP, 1,7 mmol TE/l TEAC, 0,4 mol TE/l DPPH antioksidan aktivitesi bulunmuştur. Sonuçlar buğday saplarından da, doğal fenolik asit kaynağı kepeklere yakın derecede antioksidan aktiviteye sahip fenolik bileşiklerin üretilebileceğini göstermiştir.
Literatürde buğday saplarında bulunan ferulik asidin belirlenmesi gibi ön çalışma niteliğinde bazı araştırmalar mevcuttur, ancak çalışmalar çok sınırlı sayıdadır ve detaylı değildir. Özellikle bu atıklardan ferulik ve kumarik asit üretimi için, üretim koşullarını inceleyen, üretilen ferulik ve kumarik asit verimini artırmaya çalışan ve bu esnada üretim koşullarının diğer fenolik asit verimlerine etkisini inceleyen bir çalışma
yoktur. Bu çalışma; buğday sapının ferulik ve kumarik asit üretimi ve üretim verimlerini artırmaya yönelik üretim koşulları incelenmiş ve üretim koşullarına tepkisi analiz edilmiştir. Elde edilen veriler, yapılan literatür taramasında tespit edilen boşlukların doldurulmasına katkı sağlamıştır.
Fenolik bileşiklerin gıda üzerindeki duyusal özellikleri iyileştirmesi ve antioksidan, antimikrobiyal gibi insan sağlığına olan olumlu etkileri nedeniyle birçok açıdan büyük ilgi görmektedir. Fenolik bileşikler içerisinde özellikle ferulik asit ve kumarik asit hem sağlık hem de gıda açısından en fazla ilgi gören fenolik asitlerdir. Ferulik asit gıda endüstrisinde antioksidan ve antimikrobiyal etkisinden dolayı koruyucu katkı maddesi, jel oluşturma ve lezzet verici olarak; sağlık açısından antioksidan, antimikrobiyal ve anti-inflamatuvar olarak ve kozmetik sanayinde de foto koruyucu ajan olarak uygulama alanına sahiptir. p-Kumarik asit de antioksidan aktiviteye sahiptir ve gıda sanayinde ferulik asit gibi antimikrobiyal olarak mikrobiyal gelişmeyi engelleyebilmektedir. Gelecekte lignoselülozik materyallerden, fenolik bileşiklerin üretiminin yaygınlaşması ile bu asitlerin kullanımı daha da artacaktır.
Çalışmanın sonuçları, endüstriyel boyuta taşındığında, atıkların fenolik bileşiklerin üretiminde kullanılmasıyla, daha uygun bir şekilde ortadan kaldırılması sağlanarak çevresel problemlerin önüne geçilmiş ve ürünün bir bütün olarak değerlendirilmesi yaklaşımına bir adım daha atılmış olunacaktır ve önemli bir ekonomik değeri olmayan bu atıkların katma değeri yüksek fenolik bileşiklere dönüşümüyle çiftçiye bir ek gelir sunalacak, kırsal bölgelerde istihdam ve kalkınma destekleneceği gibi ülke ekonomisine katkıda sağlanacaktır.
6. KAYNAKLAR
Acar, J., Gökmen, V., 2005. Fenolik bileşikler ve doğal renk maddeleri. Gıda Kimyası, Editör: Saldamlı İ., Hacettepe Üni. Yayıncılık, Ankara, s: 463-492.
Akkan, A. C., 2008. Bazı fenolik asit bileşiklerin kapiler elektro transforez yöntemi ile tayini (Yüksek Lisans Tezi) Anadolu Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Eskişehir.
Akpınar Ö., Sabancı S., Levent O. ve Sayalsan A., 2012. Evaluation of antioxidant activity of dilute acid hydrolysate of wheat straw during xylose production. Industrial Crops and Products 40 (2012) 39-44.
Akpınar, Ö., 2003. Production of ethanol from cellulosic materials (Sözlü sunum). Sürdürülebilir Kalkınma İçin Biyoteknoloji Çalıştayı, Ekim 21-24, Ege Üniversitesi Bilim-Teknoloji ve Araştırma Merkezi (EBİLTEM) ve TUBİTAK, İzmir.
Akpınar, Ö., Erdoğan, K. ve Bostancı, Ş., 2009. Enzymatic production of xylooligosaccharide from selected agricultural wastes. Food and Bioproducts Processing, 87, 145-151.
Akpınar, Ö., Günay, K., Yılmaz, Y., Levent, O. ve Bostancı, Ş., 2010. Enzymatic processing and antioxidant acticitiy of agricultural waste autohydrolysis liquors. Bioresources, 5 (2), 699-711.
Akpınar, Ö., Levent, O., Bostanci, S., Bakir, U. ve Yılmaz, L. (2011a). The optimization of dilute acid hydrolysis of cotton stalk in xylose production. Applied Biochemistry and Biotechnology, 163 (2), 313-325.
Akpınar, Ö., Levent, O., Sabancı, S., Uysal, R.S. ve Sapcı, B. (2011b). Optimization and comparision of dilute acid pretreatment of selected agricultural residues for recovery of xylose. Bioresources, 6 (4), 4103-4116.
Al Arni, S., Zilli, M., Converti, A., 2007. Solubilization of lignin components of food concern from sugarcane bagasse by alkaline hydrolysis. Ciencia Y Technolgia Alimentaria, 5, 271-277.
Alkaya, E., Akarsoy Altay, T., Başak Ata, A., Ölmez Çakar, S., ve Durtaş, P., 2010. İleri Teknoloji Projeleri (İTEP) Destek Programı Raporu. Ankara.
Altuğ, T., Ova, G., Demirbağ, K., Elmacı, Y., Zorba, M., Bahar, B., Gür, E. ve Uysal V., 2009. Gıda Katkı Maddeleri, Ed.; Altuğ, T., Sidaş Yayıncılık, İzmir, Türkiye, 206-209.
Amendola, D., De Faveri, D. M., Egües, I., Serrano, L., Labidi, J. ve Spigno, G., 2012. Autohydrolysis and organosolv process for recovery of hemicelluloses, phenolic compounds and lignin from grape stalks. Bioresource Technology, 107, 267- 274.
Anonim, 2007. http://www.agrowaste-tr.org/abife/index.php (11.08.2013). Anonim, 2009. Ferulic Acid. Oryza Oil&Fat Chemical Co. Ltd. (21.07.2012) Anonim, 2011. www.sutso.org.tr/phaberler.php?id=106&goste-(05.05.2011)
Anonim, 2012a. http://www. tuik.gov.tr/UstMenu.do?metod=temelist (10.09.2013). Anonim, 2012b. http://www.aso.org.tr/kurumsal/index.php?sayfa_no=55-(22.12.2012) Anonim, 2013a. http://www.tuik.gov.tr/PreHaberBultenleri.do?id=10809 (09.03.2013) Anonim, 2013b. http://www.ekodialog.com/Konular/etkinlik_nedir.html (03.06.2013) Anonim, 2013c. http://www.kimyaevi.org (15.03.2013)
Anonim, 2013e. http://en.wikipedia.org/wiki/Vanillin (11.12.2013) Anonim, 2013f. http://en.wikipedia.org/wiki/Vanillic_acid (11.12.2013) Anonim, 2013g. http://en.wikipedia.org/wiki/Syringic_acid (11.12.2013) Anonim, 2013h. http://en.wikipedia.org/wiki/Gallic_acid (11.12.2013)
Anonim, 2014a. http://commons.wikimedia.org/wiki/File:Lignin_structure (03.01.2014) Anonim, 2014b. https://www.google.com.tr/search?q=lignin (03.01.2014)
Arora, D.S., Sharma, R.K., ve Chandra, P., 2011. Biodelignification of wheat straw and its effect on in vitro digestibility and antioxidant properties. International Biodeterioration & Biodegradation, 65, 352-358.
ASTM, 1993. Annual Book of ASTM Standards, American Society for Testing and Materials (04.09). Phidelphia, PA.
Bahçegül, E., 2011. Tarımsal atıkların çevre dostu plastiklere dönüşümü. Bilim ve Teknik, 521.
Balat, M., 2011. Production of bioethanol from lignocellulosic materials via the biochemical pathway: A rewiev. Energy Conversion and Management, 52, 858- 875.
Bauer, J. L., Harbaum Piayda, B., Stöckmann, H. ve Schwarz, K., 2013. Antioxidant activities of corn fiber and wheat bran and derived extracts. LWT – Food Science and Technology, 50, 132-138.
Baysal, T., Yıldız, H., 2003. Bitkisel Fenoliklerin Kullanım Olanakları Ve İnsan Sağlığı Üzerine Etkileri. Gıda Mühendisliği Dergisi, 7(14), 29-35.
Benoit, I., Navarro, D., Marnet, N., Rakotomanomana, N., Mesen L.L., Sigoillot, J.C., Asther, M. ve Asther, M., 2006. Feruloyl esterases as a tool for release of phenolic compounds from agro-industrial by-products. Carbohydrate Reserarch, 341, 1820-1827.
Benzie, I. F. F., Strain, J. J., 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: The FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239, 70–76.
Brand-Williams, W., Cuvelier, M., Berset C, 1995. Use of free radical method to evaluate antioxidant activity. Food Science and Technology, 28, 25–30.
Browning, B. L., 1967. Determination of sugars. Methods of Wood Chemistry, Inter- Science Publishers, New York, p: 589– 590
Buranov, A. U. ve Mazza, G., 2008. Lignin in straw of herbaceous crops. Industrial Crops and Products, 28, 237-259.
Canettieri, E.V., Moraes Rocho, G.J., Carvalho, Jr, K.A., Almeida E Silva, J.B., 2007. Optimization of acid hydrolysis from the hemicellulosic fraction of Eucalyptus grandis residue using response surface methodology. Bioresource Technology, 98, 422-428.
Castro, F.B., 1994. The use of steam treatment to upgrade lignocellulosic materials for animal feed. Doctor of Philosophy in the University of Aberdeen.
Cemeroğlu B., 2009. Fenolik Bileşikler. Meyve Sebze İşleme Teknolojisi 1, Editör: Cemeroğlu B. Ankara s.76-80.
Cho, Y. S., Kim, K., Ahn, C. B., ve Je, J. Y., 2011. Preparation, characterization and antioxidant properties of gallik acid-grafted-chitosans. Carbohdyrate Polymers,
Du, L., 2008. Hull, ferulic acid, para-coumaric acid content and particle size characteristics of various barley varieties in relation to nutrient availability in ruminants. (Yüksek Lisans Tezi), University of Saskatchewan. Department of Animal and Poultry Science, Saskatoon, Canada.
Egüés, I., Sanchez, C., Mondragon, I. ve Labidi, J., 2012. Antioxidant activity of phenolic compounds obtained by autohydrolysis of corn residues. Industrial Crops and Products, 36, 164-171.
Felizón, B., Fernández-Bolaños, J., Heredia, A., ve Guillén, R., 2000. Steam-explosion pre-treatment of olive cake. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 77, 15-22.
Fengel, D., Wegener G., 1989. Wood: chemistry, ultrastructure, reactions, Walter de Gruyter, Berlin.
Garrote, G., Cruz, J. M., Domínguez, H., ve Parajó, J. C., 2003. Valorisation of waste fractions from autohydrolysis of selected lignocellulosic materials. Journal of Chemical Technology and Biotechnology, 78, 392-398.
Garrote, G., Cruz, J.M., Moure, A., Dominguez, H., Parajo, J.C., 2004. Antioxidant activity of byproducts from the hydrolytic processing of selected lignocellulosic materials. Trends in Food Science Technology 15, 191-200.
Ghaffar, S. H. ve Fan, M., 2013. Structural analysis for lignin characteristics. Biomass and Bioenergy, 30, 1-16.
Girio, F.M., Fonseca, C., Carvalheiro, L.C., Duarte, S., Marques, R. ve Bogel-Lukasik, R., 2010. Hemicelluloses for fuel etanol. Bioresource Techonology, 101, 4775- 4800.
González, J., Cruz, J.M., Domínguez, H. ve Parajó, J.C., 2004. production of antioxidant from Eucalytus globulus wood by solvent extraction of hemicellulose hydrolysates. Food Chemistry, 84, 243-251.
Göksu, E.I., Karamanlıoğlu M., Bakır, U., Yılmaz, L. ve Yılmazer, Ü. 2007. Production
and characterization of films from cotton stalk xylan. Journal
of Agricultural and Food Chemistry, 55, 10685-10691.
Halıcı, F., 2013. Ön işlen görmüş ayçiçeği ve tütün saplarından enzimatik yöntemle ksiloz üretimi. (Yüksek Lisans Tezi), Gaziosmanpaşa Üniversitesi. Gıda Mühendisliği Anabilim Dalı, Tokat.
Hansen, N. M.L.ve Plackett, D., 2008. Sustainable Films and Coatings from Hemicelluloses. American Chemical Society, (9) ,6.
Hasyierah Noor M. S., Zulkali M. M. D., Syahidah Ku K. I., 2008. Ferulic acid from lignocellulosic biomass: Review. Malaysian Universities Conferences on Engineering and Techonology March 8-10, 2008, Putra Brasmana, Perlis, Malaysia.
Howard, R.L., Abotsi, A., Jansen, E.L. ve Howard, S., 2003. Lignocellulose biotechnology: issues of bioconversion and enzyme production. African Journal of Biotechnology, 2(12), 602-619.
Itoh, A., Isoda, K., Kondoh, M., Kawase, M., Watari, A., Kobayashi, M., Tamesada, M., ve Yagi, K., 2010. Hepatoprotective effect of syringic acid and vanilic acid on CCl4-induced liver injury. Biol Pharm Bull., 33 (6), 983-7.
J.Walton, N., J.Mayer, M. ve Narbad, A., 2003. Molecules of interest vanilin. Phytochemistry, 63, 505-515.
Karamac, M., Sendrejova, E., Kosinska, A. Ve Urminska D., 2007. Presence of ferulic acid in wheat glutenin fraction and its enzymatic hydrolsates - A short report. Czech Journal of Food Science, 25 (6), 359-364.
Kim, K.H., Tsao, R., Yang, R., Cui, S. W., 2006. Phenolic acid profiles and antioxidant activities of wheat bran extracts and the effect of hydrolysis conditions. Food Chemistry, 95, 446-473.
Klepacka J., Fornal L., 2006. Ferulic acid and its position among the phenolic compounds of wheat. Criticall Reviews in Food Science and Nutrition, 46, 639- 647.
Laka, M. ve Chernyavskaya, S., 2007. Obtaining microcrystalline cellulose from softwood and hardwood pulp. Bioresources, 2 (3), 583-589.
Lawther, J.M., Sun, R. ve Banks, W.B., 1996. Fractional characterization of alkali- labile lignin and alkali-insoluble lignin from wheat straw. Industrial Crops and Products, 5, 291-300.
Li X., Yang J., Li X., Gu W., Huang J., Zhang K., 2008. The metabolism of ferulic acid via 4-vinylgusiscol tı vsnilin by Enterobacter sp. Px6-4 isolated from Vanilla root. Process Biochemistry, 43, 1132-1137.
Lu, F. ve Ralph, J., 2012. Lignin. Cereal Straw as a Resource for Sustainable Biomaterials and Biofuels, University of Wisconsin, USA, p:169-207.
Lu, G.H., Chan, K., Leung, K., Chan, C., Zhao, Z., Jiang, Z., 2005. Assay of free ferulic acid and total ferulic acid for quality assessment of Angelica sinensis. Journal of Chromatography A, 1068, 209–219.
Matkowski, A., 2008. Plant in vitro culture for the producrion of antioxidants- A review. Biotechnology Advances, 26, 548-560.
Max, B., Salgado, J.M., Cortes, S. ve Dominguez, J.M., 2010. Extraction of Phenolic acids by alkaline hydrolysis from the solid residue obtained after prehydrolysis of trimming vine shoots. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 58, 1909- 1917.
Max, B., Torrado, A.M., Moldes, A.B., Converti, A. ve Domínguez, J.M., 2009. Ferulik acid and p-coumarik acid solubilization by alkaline hydroysis of the solid residue obtained after acid prehydrolysis of vine shoot prunings: Effect of the hydroxide and pH. Biochemical Engineering Journal, 43, 129-134.
Melton, L.D. ve Smith, B.G., 2001. Determination of the uronic acid content of plant cell walls using a colorimetric assay. Current Protocols in Food Analytical Chemistry Editors: Wrolstad, R.E., Acree, T.E., Decker, E.A., Penner, M.H., Reid, D.S., Schwartz, S.J., Shoemaker, C.F., Smith, D. and Sporns, P. John Wiley & Sons, Inc., New York.
Merali, Z., D.Ho, J., R.A. Collins, S., Le Gall, G., Elliston, A., Käsper, A. ve W. Waldron, K., 2013. Characterization of cell wall components of wheat straw following hydrothermal pretreatment and fractionation. Bioresource Technology, 131, 226-234.
Miller, G.L., 1959. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Analytical Chemistry, 31, 426-428.
Mohd Salleh, N.H., Zulkali, M., Daud, M., Arbain, D., Syarhabil Ahmad, M., ve Ku Ismail, K.S., 2011. Optimization of alkaline hydroysis of paddy straw for ferulic acid extraction. Industrial Crops and Products, 34 (3), 1635-1640.
Montane, D., Farriol, X., Salvad’ o, J., Jollez, P. ve Chornet, E., 1998. Fractionation of wheat straw by steam-explosion pretreatment and alkali delignification. Cellulose pulp and byproducts from hemicellulose and lignin. Journal of Wood Chemistry and Technology, 18, 171–191.
Moure, A., Domínguez, H., ve Parajó, J. C., 2005. Antioxidant activity of liquors from aqueous treatments of Pinus radiata wood. Wood Science and Technology, 39, 129-139.
Mussato, S.I., Dragone, G., and Roberto, I.C., 2007. Ferulic and p-coumaric acids extraction by alkaline hydrolysis of brewer’s spent grain. Industrial Crops and Products, 25, 231-237.
Ou S., Kwok K., 2004. Ferulic acid: pharmaceutical functions, preparation and applications in foods. Journal of the Science of Food and Agriculture, 84, 1261- 1269
Ou, S.Y., Luo, Y.L., Huang, C.H. ve Jackson, M., 2009. Production of coumaric acid from sugarcane bagasse. Innovative Food Science and Emerging Technologies, 10, 253-259.
Palonen, H., 2004. Role of lignin in the enzymatic hydrolysis of lignocellulose. (Doktora Tezi), Helsinki University of Technology, Finland.
Parajo, J.C., Dominguez, H. ve Dominguez, J.M., 1998. Biotechnological production of xylitol. Part 1: Interest of xylitol and fundamentals of its biosynthesis. Bioresource Technology, 65, 191-201.
Park, Y.C. ve Kim, J.S., 2012. Comparison of various alkaline pretreatment methods of lignocellulosic biomass. Energy, 47, 31-35.
Pasha, I., Saeed F., Waquas, K., Anjum, F. M., Arshad, M.U., 2013. Nutraceutical and Functional Scenerio of Wheat Straw. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 53, 287-295.
Peng, F., Peng, P., Xu, F. ve Sun R-C., 2012. Franctional purification and bioconversion of hemicelluloses. Biotechnology Advances, 30, 879-903.
Ramos, L.P., 2003. The chemistry involved in the steam treatment of lignocellulosic materials. Quim. Nova, 26 (6), 863-871.
Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M., Rice-Evans, C., 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine, 26, 1231–1237.
Ruiken, C.J., Breuer, G., Klaversma, E., Santiago, T. ve van Loosdrecht, M.C.M., 2013. Sieving wastewater – Cellulose recovery, economic and energy evaluation. Water Research, 47, 43-48.
Sabancı, S., 2012. Buğday Tarlası Atıklarından Ksilitol Üretim Koşularının Optimizasyonu ve Ksilitolün Saflaştırılması. (Yüksek Lisans Tezi), Gaziosmanpaşa Üniversitesi. Gıda Mühendisliği Anabilim Dalı, Tokat.
Saha, B. C., 2003. Hemicellulose bioconversion. J Ind Microbiol Biotechnol, 30, 279 - 291.
Saito, K., Hasa, Y. ve Abe, H., 2012. Production of lactic acid from xylose and wheat straw by Rhizopus oryzae. Journal of Bioscience and Bioengineering, 114 (2), 166-169.
Salgado, J.M., Max, B., Rodríguez-Solana, R. Ve Domínguez, J.M., 2012. Purification of feruliz acid solubilized from agroindustrial wastes and further conversion into 4-vinyl guaiacol by Streptomyces setonii using solid state fermentation. Industrial Crops and Products, 39, 52-61.
Samarayanaka, A.G.P. ve Li-Chan, E.C.Y., 2011. Food-derived peptidic antioxidants: A review of their production, assessment and potential applications. Journal of Functional Foods, 3, 229-254.
Sapcı, B., 2012. Pamuk Saplarından Antioksidan ve Ksilitol Üretimi. (Yüksek Lisans Tezi), Gaziosmanpaşa Üniversitesi. Gıda Mühendisliği Anabilim Dalı, Tokat.
Sarangi P.K., Sahoo H.P., 2010. Ferulic acid production from wheat bran using Staphylococcus aureus. NewYork Science Journal, 3(4), 79-81.
Sasaki, C., Sumimoto, K., Asada, C. ve Nakamura, Y., 2012. Direct hydrolysis of cellulose to glucose using ultra-high temperature and pressure steam explosion. Carbohydrate Polymers, 89, 298-301.
Saulnier L., Marot C., Elgorriaga M., Bonnin E., Thibault J.F., 2000. Thermal and enzymatic treatments for the release of free ferulic acid from maize bran. Carbohydrate Polymers, 45, 269-275.
Saulnier, L., Vigouroux, J., Thibault, J., 1995. Isolation and partial characterization of feruloyted oligosaccharides from maize bran. Carbohydrate Research, 272, 241- 253.
Sharma, O.P., Bhat,T.K., Singh, B.,1998. Thin-layer chromatography of gallic acid, methyl gallate, pyrogallol, phloroglucinol, catechol, resorcinol, hydroquinone, catechin, epicatechin, cinnamic acid, p-coumaric acid, ferulic acid and tannic acid. Journal of Chromatography. A822, 167-171
Shelton, D.R. ve Lee, W.J., 2000. Cereal Carbonhydrates. In: Kulp, K. ve Ponte, J.G., editor. Handbook of Cereal Science and Technology. p. 385-417.
Silva, C.G., Grelier, S., Pichavant, F., Frollini, E., Castellan, A., 2013. Adding value to lignins isolated from sugarcane bagasse and Miscanthus. Industrial Crops and Products, 42, 87-95.
Singleton, V.L., Rossi, J.A., 1965. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticuture, 16, 144-158.
Song, F.L., Gan, R.Y., Zhang, Y., Xiao, Q., Kuang, L., ve Li, H.B., 2010. Total phenolic contents and antioxidant capacities of selected chinese medicinal plants. International Journal of Molecular Sciences, 11, 2362-2372.
Sun, R., Lawther, J.M. ve Banks, W.B., 1997. A tentative chemical structure of wheat straw lignin. Industrial Crops and Products, 6, 1-8.
Sun, R.C., Sun, X.F. ve Ma, X.H., 2002. Effect of ultrasound on the structural and physiochemical properties of orgasolv soluble hemicelluloses from wheat straw. Ultrasonics Sonochemistry, 9, 95-101.
Sun, R.C., Sun, X.F. ve Zhang, S.H., 2001. Quantitative determination of hydroxycinnamic acids in wheat, rice, rye and barley straws, maize stems, oil palm frond fiber and fast-growing poplar wood. Journal of Agricultural Food Chemistry, 49, 5122-5129.
radical scavening activity of cocrystals caffeine:cinnamic acid and caffeine:eosin dihydrate. Journal of Molecular Structure, 1050,88-96.
Torre P., Aliakbarian B., Rivas B., Dominguez J.M., Convertti A., 2008. Release of ferulik acid from corn by alkaline hydrolysis. Biochemical Engineering Journal,
40, 500-506.
Turhan, S., Üstün, N.Ş., 2006. Doğal antioksidanlar ve gıdalarda kullanımı. Türkiye 9. Gıda Kongresi, 24-26 Mayıs, 2006, Bolu.
Vázquez, G., Fernández-Agullo, A., Gomez-Castro, C., Freire, M.S., Antorrena, G. ve González-Alvárez, J., 2012. Response surface optimization of antioxidants extraction from chesnut (Castana sativa) bur. Industrial Crops and Products, 35, 126-134.
Verma, B., Huci, P., Chibbar, R.N., 2009. Phenolic acid composition and antioxidant capacity of acid and alkali hydrolysed wheat bran fractions. Food Chemistry, 116, 947-954.
White, P.J. ve Xing, Y., 1997. Antioxidants from cereals and legumes. In:Shahidi, F. (Ed.), Natural Antioxidants. Chemistry, Health Effects and Applications. AOCS Press, Illinois, pp. 25–63.
X.Pan, G., L., Bolton, J. ve J.Leary, G., 1998. Determination of ferulic and p-coumaric acids in wheat straw and the amounts released by mild acid and alkaline peroxide treatment. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 46, 5283-5288. Xu, F., Sun, R. C., Liu, C. F., He, B.H. ve Fan J. S., 2005. Detemination of cell wall
ferulic and p-coumaric acids in sugarcane bagasse. Anaytica Chimia acta, 552, 207-217.
Yen, G.C. ve Chang, Y.C., 2003. Production of antioxidant from Aspergillus candidus broth filtrate by fermentor. Process Biochemistry, 38, 1425-1430.
Zhang, R., Xiao, X., Tai, Q., Huang, H., Yang, J. ve Hu, Y., 2012. preparation of lignin- silica hybrids and its application in intumescent flame-retardant poly(lactic acid) system. High Performance Polymers, 1-9.
Zhao Z. ve H. Moghadasian M., 2008. Chemistry , natura sources, dietary intake and pharmacokinetic properties of ferulic acid: A review. Food Chemistry, 109, 691- 702.
Zhou, K., Su, L., ve Yu, L. L., 2004. Phytochemicals and antioxidant properties in wheat bran. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 52, 6108–6114.
EK A. Üronik Asit Tayininde Kullanılan Çözeltilerin Hazırlanması ve Standardı EK B. Troloks Eşdeğeri Antioksidan Kapasitesi (TEAC) Tayininde Kullanılan
Çözeltilerin Hazırlanması ve Standardı
EK C. Demir (III) İndirgeme Antioksidan Gücü (FRAP) Tayininde Kullanılan
Çözeltilerin Hazırlanması ve Standardı
EK D. DPPH Radikal Süpürme Aktivitesi Tayininde Kullanılan Çözeltilerin
Hazırlanması ve Standardı
EK E. Toplam Fenolik Madde Tayininde Kullanılan Çözeltilerin Hazırlanması ve
Standardı
EK F. DNS Metodu Çözeltisinin Hazırlanması ve Standardı
EK G. TLC Metodunda Kullanılan Çözeltilerin Hazırlanması ve TLC Örneği EK H. HPLC için Kullanılan Çözeltilerin ve Standart Çözeltilerin Hazırlanması ve
EK A. Üronik Asit Yönteminde Kullanılan Çözeltilerin Hazırlanması
%0,5 NaOH Çözeltisi: 0,5 g NaOH saf su içinde çözündürülerek, hacmi 100 ml’ye
tamamlanmıştır.
m-hidroksidifenil Çözeltisi: 0,15 g 3-fenilfenol, 80 ml %0,5 NaOH çözeltisi ile
karıştırılmış ve hacmi 100 ml’ ye %0,5 NaOH ile tamamlanmıştır.
75 mM Sodyumtetraborat Çözeltisi: 1,501 sodyumtetraborat, 90 ml konsantre
sülfürik asit içinde çözündürülerek hacmi 100 ml’ye sülfürik asitle tamamlanmıştır.
4 M Sülfamik asit/Potasyum Sülfamat Çözeltisi: 38,84 g sülfamik aside 50 ml saf su
eklenmiş ve doygun KOH çözeltisi yavaş yavaş eklenerek pH 1,6’ ya ayarlanmıştır ve hacmi 100 ml’ ye doygun KOH ile tamamlanmıştır.
y = 6,4165x - 0,0243 R2 = 0,9924 0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 0,7 0 0,02 0,04 0,06 0,08 0,1 0,12 ug/ul ab s
EK B. Troloks Eşdeğeri Antioksidan Kapasitesi (TEAC) Tayininde Kullanılan Çözeltilerin Hazırlanması ve Standardı
20 mM Sodyum Asetat Tamponu: 0,82 g sodyum asetat, 400 ml saf suda
çözündürülmüş, pH’sı asetik asitle 4,5’e ayarlanmış ve hacmi 500 ml’ye saf suyla tamamlanmıştır.
7 mM ABTS (2,2’-Azino-bis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)) Çözeltisi: 192
mg ABTS saf suda çözündürülmüş ve hacmi 50 ml’ye saf suyla tamamlanmıştır.
2,45 mM Potasyum Peroksidisülfat Çözeltisi: 33,1 mg potasyum peroksidisülfat saf
suda çözündürülmüş ve hacmi 50 ml’ye saf suyla tamamlanmıştır.
ABTS ve potasyum peroksidisülfat çözeltisi analiz yapılmadan önce 1:1 oranında karıştırılmış ve bir gece karanlık ortamda bekletilmiştir.